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.2010年12月15日;19(24):4861-70。
doi:10.1093/hmg/ddq419。 Epub 2010年9月24日。

线粒体吞噬诱导后,线粒体融合蛋白1和线粒体融合蛋白2以PINK1/parkin依赖的方式泛素化

附属公司

线粒体吞噬诱导后,线粒体融合蛋白1和线粒体融合蛋白2以PINK1/parkin依赖的方式泛素化

马修·盖格等。 人类分子遗传学. .

勘误表in

  • 人类分子遗传学。2013年4月15日;22(8):1697

摘要

线粒体功能障碍和蛋白质的紊乱降解与帕金森病(PD)的发病机制有关。Parkin和PINK1基因的突变是家族性PD的一个原因。PINK1是一种与线粒体相关的假定激酶,PINK2表达的缺失会导致线粒体功能障碍,并随着时间的推移而增加。Parkin被认为是PINK1的下游,也通过大自噬(线粒体自噬)介导受损线粒体的去除。我们研究了RNAi降低PINK1表达后多巴胺能SH-SY5Y细胞的线粒体功能障碍是否部分是由于有丝分裂受到抑制。在PINK1沉默12天后,通过宏观自噬途径的流量减少与ATP合成的抑制相一致。这些细胞中parkin的过度表达恢复了自噬流量和ATP合成。过度表达和RNAi研究也表明,在CCCP诱导的线粒体损伤后,PINK1和parkin是线粒体吞噬所必需的。在CCCP治疗的3小时内,检测到一些线粒体蛋白的泛素化,包括线粒体融合蛋白1和线粒体融合蛋白2。帕金或PINK1沉默后,这些翻译后修饰减少。线粒体蛋白的泛素化似乎可以识别线粒体的降解并促进有丝分裂。因此,PINK1和parkin是去除多巴胺能细胞中受损线粒体所必需的,并且该途径的抑制可能导致缺陷线粒体的积累,这可能有助于PD的发病机制。

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数字

图1。
图1。
PINK1沉默12天后ATP合成和自噬通量。将PINK1 siRNA#2或对照siRNA转染SH-SY5Y细胞或Park OE细胞12天。(A类)通过胰蛋白酶化法获取细胞,用洋地黄素渗透,并在37°C下与谷氨酸+苹果酸(复合物I、III、IV)、琥珀酸+鱼藤酮(复合物II、III、Ⅳ)或抗坏血酸+TMPD(复合物IV)孵育,以测量ATP合成。ATP通过荧光素酶测定测定,并归一化为细胞数。数据表示为对照siRNA ATP合成百分比(平均值±SEM;n个= 5). *P(P)与对照siRNA相比<0.05(B类)从未经处理的细胞(基底细胞)或用溶酶体抑制剂E64d和胃蛋白酶抑制素A(均为10μg/ml)处理3 h的细胞制备细胞裂解物。用LC3抗体检测蛋白质印迹,用抗β-肌动蛋白抗体评估等蛋白载量。测量条带密度,并将LC3-II/LC3-I比率归一化为β-肌动蛋白。数据表示为基础条件下或存在溶酶体抑制剂时对照siRNA处理细胞系的百分比(n个= 5). *P(P)与基础条件下ParkSH+siRNA相比,<0.05。
图2。
图2。
CCCP诱导的有丝分裂需要parkin和PINK1的表达。(A类)含有空载体(SH)或Park OE细胞的SH-SY5Y细胞用载体[0.05%(v/v)乙醇]或10μ评估CCCP、裂解物和CS活性。数据表示为载体处理细胞的%CS活性(平均值±SEM;n个= 5). *P(P)<0.05与车辆和**P(P)与车辆相比<0.01。(B类)用载体或CCCP处理细胞24 h,用western blot检测细胞裂解和线粒体蛋白表达(TFAM,MTCOII)。通过检测GAPDH评估等负荷。四个单独实验的印迹代表。(C类)正常SH-SY5Y细胞(对照组)、parkin KD细胞或Park OE细胞用载体或CCCP处理16 h,裂解并测定CS活性。数据表示为nmol/min/mg蛋白质(平均值±SEM;n个=5)*P(P)<0.05与车辆和**P(P)与车辆相比<0.01。(D类)用PINK1 siRNA或对照siRNA处理SH-SY5Y细胞或Park OE细胞72小时。最后16小时,用载体或CCCP处理细胞。然后测量CS活性。数据表示为nmol/min/mg蛋白质(平均值±SEM;n个= 5). *P(P)<0.05与对照siRNA+CCCP和**P(P)与对照siRNA+CCCP相比<0.01。
图3。
图3。
CCCP治疗后线粒体蛋白的泛素化。(A类)用载体[0.05%(v/v)乙醇]或10µCCCP 3 h,分离线粒体并进行western blot。用泛素抗体检测蛋白质印迹。通过探测复合物I的39 kDa亚基(箭头所示)来确定等负荷。四个单独实验的印迹代表。(B类)用CCCP处理Park OE细胞3h,分离线粒体并检测VDAC1或(C类)western blot法检测抑制蛋白(PHB1)。(D类)用CCCP处理Park OE细胞3h,用western blot检测细胞裂解液中的Drp1。(E类)从Park OE细胞分离的线粒体经载体或CCCP处理3 h后,检测MFN-1或(F类)通过western blot检测MFN-2。翻译后修饰的蛋白质用箭头表示。非特定波段用星号表示。印迹是至少四个独立实验的代表。
图4。
图4。
CCCP治疗后MFN-1和MFN-2的泛素化。(A类)包含空矢量或(B类)用10µ使用针对MFN-1和MFN-2的抗体通过western blot评估0–3 h CCCP、制备细胞裂解物和MFN-1及MFN-2翻译后修饰。用抗线粒体蛋白SDHA的抗体对印迹物进行再验证,以评估每个裂解物中的线粒体含量。(C类)从含有载体或10µCCCP 2 h。内源性MFN-1从线粒体部分和泛素化物种中免疫沉淀,通过western blotting检测。然后用MFN-1抗体对印迹进行再验证。(D类)MFN-2从线粒体组分中免疫沉淀,并如上所述检测到泛素化。印迹是至少三个独立实验的代表。泛素化的物种用箭头表示。
图5。
图5。
MFN-1和MFN-2的泛素化需要Parkin和PINK1。(A类)对照组或Parkin KD细胞用载体或CCCP处理2 h,制备细胞裂解物和MFN-1或(B类)使用MFN-1和MFN-2抗体通过western blot评估MFN-2的泛素化。(C类)未转染SH-SY5Y细胞(UT),转染PINK1 siRNA#1或PINK1-siRNA#2或转染对照siRNA 72小时。然后用10µCCCP 2 h,制备细胞裂解物并用western blot分离。用针对MFN-1的抗体探测印迹,或(D类)MFN-2。用SDHA抗体对斑点进行线粒体含量的再验证。印迹是至少三个独立实验的代表。无所不在的物种用箭头表示。

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