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.2010年6月1日;184(11):6177-87.
doi:10.4049/jimmunol.0904085。 Epub 2010年5月5日。

p53通过抗氧化功能抑制类开关重组为IgG2a

附属公司

p53通过其抗氧化功能抑制IgG2a的类开关重组

杰罗恩·E·J·吉克马等。 免疫学杂志. .

勘误表in

  • 免疫学杂志。2011年11月1日;187(9):4920

摘要

Ig类开关重组(CSR)发生在活化的成熟B细胞中,并导致IgM同型与IgG、IgE或IgA同型交换,从而提高体液免疫反应的有效性。重组需要在发生CSR的重组开关(S)区发生DNA ds断裂。激活诱导的胞苷脱氨酶通过S区胞嘧啶的脱氨基作用,启动DNA ds断裂形成。该反应需要活性氧(ROS)中间体,如羟基自由基。在本研究中,我们发现ROS清除剂N-乙酰半胱氨酸抑制CSR。我们还证明,用于诱导IgG2a转换的IFN-gamma治疗增加了细胞内ROS水平,并激活了转换B细胞中的p53,并且表明p53通过其抗氧化调节功能抑制IgG2a类转换。最后,我们发现p53抑制了发生CSR的B细胞S区的DNA断裂和突变,表明p53抑制激活诱导的胞苷脱氨酶的活性。

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数字

图1
图1。p53缺乏的脾B细胞在培养中显示IgG2a转换增加
CFSE负载的脾B细胞来自p53−/−和野生型同窝小鼠与脂多糖、细胞因子和/或抗δ-右旋糖酐培养2.5天,以诱导Ig类转换为指示的同型。(A) 流式细胞术检测细胞CSFE稀释度和表面Ig;示出了代表性的FACS图;开关单元的百分比显示在门内。(B) 来自8个实验(8组小鼠)的数据被归一化为野生型同窝鼠(WT)的交换百分比,显示为100%。接入平均百分比p53−/−显示了不同同型物相对于WT(+SEM)的变化。显著性由一个样本确定t吨测试。
图2
图2。多瘤病毒感染p53−/−小鼠体内IgG2a转换增加
p53−/−,援助−/−和野生型同窝小鼠腹腔接种2×106多瘤病毒A2株pfu。接种后12–20天,通过流式细胞术分析脾脏生发中心B细胞的表面同型表达。(A) FACS图显示了感染后14天采集细胞的实验中B220+GL7+脾B细胞表面Ig的表达。在门的旁边描绘了切换单元的百分比。(B) 数据点和条代表单个小鼠和平均值(野生型n=7,野生型n=5p53−/−)B220+GL7+脾生发中心B细胞亚群内的同种型转换细胞百分比。使用3、2和2只野生型小鼠、1、2和p53−/−小鼠,在第二个实验中(如图所示)2援助−/−包括小鼠。重要性由Mann-Whitney决定U型测试。
图3
图3。Nutlin-3治疗抑制多个同型细胞的CSR而不影响细胞增殖
CFSE负载的野生型脾脏B细胞被激活以进行CSR至所指示的Ig同种型。在培养开始时添加2.5µM Nutlin-3或溶剂对照(DMSO)。培养2.5天后,通过流式细胞术检测表面Ig来评估等级转换。(A) 4个实验的数据被归一化为未经处理的(DMSO)脾B细胞的转换百分比,显示为100%。显示了Nutlin-3处理的脾B细胞相对于未处理的不同同型细胞的平均转换百分比(+SEM)。显著性由一个样本确定t吨测试。(B) 图中显示了用2.5µM Nutlin-3(蓝色轮廓)或DMSO载体对照物(红色轮廓)处理后激活的脾B细胞转换为所示同种类型的重叠CSFE直方图。
图4
图4。S区域DSB增加p53−/−脾B细胞诱导IgG2a转换
对野生型(WT)分离的GAPDH标准化DNA的三倍稀释液进行Sμ和Sγ2a LM-PCR,p53−/−、和援助−/−用LPS+IL4或LPS+IFNγ刺激脾脏B细胞2天。分别使用5’Sμ或5’Sγ2a引物,结合结合物特异性引物,对Sμ和Sγ2a中的钝性DSB进行评估。PCR产物分别用内部Sμ或Sγ2a探针进行印迹和杂交。(A) 激活细胞内SμDSB进行IgG1转换。(B) 激活细胞内SμDSB进行IgG2a转换。(C) 激活细胞内Sγ2a DSB进行IgG2a转换。(D) 条形图描绘了放射自显影膜的密度测量平均值(+SEM),标准化为WT,设定为1.0(所有实验的n=4,IgG2a条件下的Sγ2a DSBs除外,n=3。)将所有3个滴定道一起扫描。每个重复实验都是在一组单独的小鼠身上进行的。使用两组小鼠进行了两项独立实验。(E) WT和p53−/−脾B细胞被激活以进行IgG3转换。绘制WT(黑条)和p53−/−(白条)每50个核苷酸片段的突变频率。总突变频率增加了3.1倍p53−/−与重量相比(p=0.00001)。WT的总突变/核苷酸分析:31/10231;对于p53:30/3182。
图5
图5。IFNγ+LPS激活转换B细胞中的p53
(A) 体外脾B细胞中Ser18磷酸化p53(pSer18)的Western blot分析,用LPS+抗δ-右旋糖酐或LPS+反δ-右旋糖苷+干扰素γ刺激B细胞2天。以5Gy照射活化的脾B细胞作为阳性对照。Gapdh用于蛋白质负荷控制。这个实验进行了两次,每次使用一只老鼠的细胞。(B) 定量PCR分析LPS+抗δ-右旋糖酐或LPS+反δ-右旋糖苷+干扰素γ刺激48小时后WT脾B细胞p21 mRNA表达。用2.5µM Nutlin-3处理的细胞作为阳性对照,p53−/−单元格作为阴性对照。条形图描述了用LPS+抗δ-右旋糖酐刺激的野生型脾B细胞的相对p21 mRNA丰度。显著性由一个样本确定t吨测试。使用4组小鼠进行了四项独立实验。(C) 定量PCR分析受刺激的WT脾脏B细胞中与hprt mRNA相关的倍体蛋白1 mRNA表达,以转换为方法中所述的指示同种型。数据来自一个实验,PCR一式三份。
图6
图6。p53 Ser18磷酸化调节IgG2a转换
将p53S18A和野生型对照小鼠的CFSE负载的脾B细胞与LPS、细胞因子和/或抗δ-右旋糖酐培养2.5天,以诱导Ig类转换为指示的同种型。通过流式细胞术测定表面Ig染色的类别转换。(A) 显示了具有代表性的FACS图。上部面板显示来自相同群体的野生型小鼠和p53S18A脾脏B细胞的CFSE负荷相等。开关单元的百分比显示在门内。(B) 条形图描绘了来自4组小鼠的数据,这些数据都在一个实验中进行了分析。图中显示了不同同型的p53S18A中CSR相对于WT(+SEM)的百分比。显著性由一个样本确定t吨测试。
图7
图7。切换ROS增加p53−/−脾B细胞;NAC抑制CSR并消除增加的IgG2a开关p53−/−脾脏B细胞
(A) 所示为野生型(红色剖面)和p53−/−装载CM-H的(蓝色剖面)脾B细胞2-用LPS+抗δ-右旋糖酐+干扰素γ激活48小时后的DCFDA荧光ROS探针。用10 mM(蓝色剖面)和20 mM NAC(绿色剖面)处理可降低激活野生型和p53−/−脾B细胞。(B) 激活CFSE负载细胞进行IgG2a转换,并用10 mM NAC处理。2.5天后通过流式细胞术检测表面Ig染色来评估IgG2a的转换。显示了3个独立实验的典型FACS图。门内给出了IgG2a开关细胞的百分比。(C) 用LPS+细胞因子和/或抗δ-右旋糖酐激活CFSE负载的野生型脾B细胞,以将CSR诱导至指示的Ig同种型。采用流式细胞术检测CSR表面Ig染色。开关单元的百分比显示在门内。顶行显示未经处理的对照培养物,中间行显示用10 mM NAC处理的培养物。底行显示对照培养物(红色图谱)和10mM NAC处理的培养物(蓝色图谱)中的CSFE荧光的叠加直方图。给出了三个实验的典型FACS图。(D) 条形图显示了3个实验中未处理细胞的数据,显示为100%。显示了NAC处理的培养物中与未处理培养物相比的切换细胞百分比的平均值(+SEM)。显著性由一个样本确定t吨测试。(E) 对野生型和野生型Gapdh标准化DNA的三倍稀释液进行SμLM-PCR援助−/−用LPS+抗δ-右旋糖酐(含或不含10 mM NAC)激活脾B细胞2天。对LM-PCR产物进行印迹并与内部Sμ探针杂交。对代表三倍稀释度的所有三条车道进行密度扫描。将未经处理的样品设置为1.0,以确定相对密度。给出了两个实验的典型结果。

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