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.2010年3月31日;30(13):4573-84.
doi:10.1523/JNEUROSCI.5597-09.2010。

血管生成因子血管生成素-1是室下区干/祖细胞上的前神经生成肽

附属机构

血管生成因子血管生成素-1是室下区干/祖细胞上的前神经生成肽

亚历山德拉一世罗莎等。 神经科学. .

摘要

在成年哺乳动物的大脑中,脑室下区(SVZ)承载着不断生成新神经元的干细胞。血管生成素-1(Angiopietin-1,Ang-1)是一种内皮生长因子,通过Tie-2受体活性在内皮细胞的分裂、存活和粘附中发挥关键作用。Tie-2在非内皮细胞,特别是神经元和干细胞中的表达表明Ang-1可能参与神经发生。在本研究中,我们研究了Ang-1在SVZ神经发生中的假定作用。来自SVZ衍生神经球的未成熟细胞表达Ang-1和Tie-2 mRNA,表明Ang-1/Tie-2系统在神经原生态位中的作用。此外,我们还发现Tie-2蛋白在神经元和胶质细胞的分化过程中保持表达。Ang-1通过激活ERK1/2(细胞外信号调节激酶1/2)丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)激酶途径触发增殖,但不诱导细胞死亡。因此,与抗Tie-2中和抗体共培养可阻止Ang-1的促增殖作用。此外,Ang-1增加了培养物中NeuN(神经元核蛋白)阳性神经元的数量,以及通过监测神经元和未成熟细胞施加特定刺激后[Ca(2+)](i)增加的功能神经元的数量。Ang-1的前神经原效应通过Tie-2激活和随后的mTOR(哺乳动物雷帕霉素激酶靶点)动员介导。一致的是,暴露于抗Tie-2中和抗体和雷帕霉素后,神经元分化显著降低。此外,Ang-1诱导SAPK(应激激活蛋白激酶)/JNK(c-Jun N末端激酶)MAPK的激活,参与轴突发生。我们的研究显示了Ang-1的前神经原作用,突出了血管/干细胞相互作用与健康和疾病的相关性。

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数字

图1。
图1。
SVZ细胞同时表达Ang-1和Tie-2。A类SVZ神经球中Ang-1和Tie-2 mRNA的RT-PCR检测。通道1和通道2分别对应于阴性对照(非模板阴性对照)和阳性对照(小鼠胎盘组织中的总mRNA)。3号通道对应于SVZ神经球。Ang-1,~101 bp;第2级,约313 bp。B类,通过免疫印迹法检测SVZ神经球中的Tie-2和Ang-1蛋白。通道1对应于阳性对照(形成小鼠胎盘的总蛋白),通道2对应于SVZ增殖细胞。C类,D类,描绘SVZ神经球中Tie-2和Ang-1免疫反应的典型荧光共焦数字图像(Tie-2与Ang-1的红色染色;巢蛋白的绿色染色,作为未成熟细胞的标记)c1级二氧化碳、和第1天第2天是正方形的放大倍数C类D类分别是。E类,Tie-2受体在电镀后2天迁移出神经球的SVZ细胞中保持不变,并在成神经细胞中表达(Tie-2的红色染色;DCX的绿色染色,未成熟神经元的标记)。F类分化7天后,SVZ细胞源性神经元中也保留有Tie-2受体(Tie-2呈红色染色;Tau蛋白呈绿色染色,为轴突标记物)。G公司,H(H),Tie-2表达分别保留在星形胶质细胞(Tie-2的红色染色;GFAP的绿色染色)和少突胶质细胞祖细胞(Tie-2的红色着色;NG2硫酸软骨素蛋白聚糖的绿色染色,少突胶质祖细胞的标记)中。箭头表示Tie-2标记的区域。Hoechst 33342染色(蓝色)用于观察细胞核。比例尺,20μm。
图2。
图2。
Ang-1调节小鼠SVZ细胞培养物中的细胞增殖,这种效应由Tie-2受体介导。A类,B类,分别在对照培养物和用500 ng/ml Ang-1处理的培养物中BrdU(红核)和Hoechst 33342染色(蓝核)的代表性荧光共聚焦数字图像。C类,条形图描绘了对照培养物和暴露于500 ng/ml Ang-1和/或5μg/ml抗Tie-2中和抗体48小时的培养物中BrdU阳性细胞的数量,以计数细胞核总数的百分比表示。数据以平均值±SEM表示***第页<0.001,使用未配对学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+++第页<0.001,使用未配对学生t吨与Ang-1处理的SVZ培养物进行比较的试验。D类,E类,代表z(z)-对照SVZ培养物的共聚焦数字图像叠加显示BrdU阳性细胞(红色)Tie-2(白色染色)和DCX(绿色染色)阳性(D类)或巢蛋白(绿色染色)(E类). 箭头表示三重标签区域。Hoechst 33342染色(蓝色)用于观察细胞核。比例尺,20μm。
图3。
图3。
Ang-1调节小鼠SVZ细胞培养物中的细胞增殖,这种作用由MAPK/ERK激酶途径介导。条形图描述了BrdU阳性细胞的数量,用每个培养物、对照培养物和暴露于500 ng/ml Ang-1和/或20μU0126是MEK1和-2的一种高选择性抑制剂,持续48小时。数据表示为平均值±SEM***第页< 0.001, **第页< 0.01, *第页<0.05,使用未配对学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+++第页<0.001,使用未配对学生t吨与Ang-1处理的SVZ培养物进行比较的试验。
图4。
图4。
Ang-1通过激活Tie-2诱导小鼠SVZ细胞培养中的神经元分化。A类,B类、对照SVZ培养物中NeuN-阳性神经元(红核)和Hoechst 33342染色(蓝核)的代表性荧光显微照片(A类)以及用Ang-1处理的培养物(B类). 比例尺,20μm。C类,条形图描述了NeuN-阳性细胞的数量,表示为每培养物、对照培养物和用500 ng/ml Ang-1和/或5μg/ml抗Tie-2中和抗体处理7天的培养物中细胞总数的百分比。数据表示为平均值±SEM***第页<0.001,使用未配对学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+第页<0.05,使用未配对学生t吨与Ang-1处理的SVZ培养物的比较试验。D类,E类,βIII微管蛋白的代表性Western blots(D类)和总建筑面积(E类)-β-肌动蛋白印迹作为SVZ细胞总蛋白提取物的负荷对照物,在缺乏(对照)或存在500 ng/ml Ang-1的情况下处理7天。F类,G公司,SVZ细胞培养物的典型共焦数字图像,在没有处理的情况下处理7天(对照)(F类)或存在500ng/ml Ang-1(G公司)βIII微管蛋白(绿色染色)和GFAP(红色染色)染色。Hoechst 33342染色(蓝色)用于观察细胞核。比例尺,50μm。
图5。
图5。
Ang-1通过激活Tie-2增加小鼠SVZ细胞培养物中神经样反应细胞的生成。A类用克雷布斯溶液连续灌注SVZ培养物15分钟,并用50 mKCl和2分钟(从10分钟到12分钟),100μ组胺。B–D类所示为对照培养物中20个细胞反应的典型单细胞钙成像曲线(B类),在500 ng/ml Ang-1暴露培养基中(C类),在用500 ng/ml Ang-1和5μg/ml抗Tie-2中和抗体处理的培养物中(D类).E类条形图描述了SVZ对照培养物和暴露于Ang-1和/或Tie-2抗体7天的培养物中神经样反应细胞的百分比。数据表示为平均值±SEM**第页<0.01,使用未配对学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+第页<0.05,使用未配对学生t吨与Ang-1处理的SVZ培养物的比较试验。
图6。
图6。
Ang-1通过mTOR增加小鼠SVZ细胞培养物中神经样反应细胞的生成。用克雷布斯溶液连续灌流SVZ培养物15分钟,并用50 m刺激2分钟(从5分钟到7分钟)KCl和2分钟(从10分钟到12分钟),100μ组胺。条形图描述了SVZ对照培养物和暴露于500 ng/ml Ang-1和/或20 n的培养物中神经样反应细胞的百分比雷帕霉素7天。数据表示为平均值±SEM***第页<0.001,使用未配对学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+++第页<0.001,使用未配对学生t吨与Ang-1处理的SVZ培养物的比较试验。
图7。
图7。
Ang-1诱导生长轴突上SAPK/JNK通路的激活。A类代表性的荧光共焦数字图像描绘了用500 ng/ml Ang-1处理6小时的培养物中的P-SAPK/JNK(绿色)、Tau蛋白(红色)和Hoechst 33342染色(蓝色细胞核)。生长轴突(P-SAPK/JNK和Tau的双重标记)用箭头表示。比例尺,20μm。B类,C类条形图描述了P-JNK阳性分支的总长度(以微米为单位)和每个神经圈的分支数。数据表示为平均值±SEM。使用数字图像(放大20倍),在两个独立培养液制备的每份盖玻片的~20个非重叠区域进行测量**第页< 0.01; ***第页<0.001,使用未配对的学生t吨与SVZ对照培养物的比较试验。+第页< 0.05,+++第页<0.001使用未配对学生t吨用于与用Ang-1处理的SVZ培养物进行比较的测试。
图8。
图8。
Tie-2在SVZ、RMS和嗅球沿线的神经元中表达。A类,B类,代表z(z)-SVZ的共聚焦数字图像叠加显示BrdU阳性干/祖细胞(BrdU的红核染色和EGFR的绿色染色)(A类)和BrdU阳性神经母细胞(BrdU的红核染色和DCX的绿色染色)(B类)两种细胞类型均表达Tie-2(白色染色)。C类,代表z(z)-RMS的共聚焦数字图像叠加显示DCX成神经细胞(绿色染色)表达Tie-2(红色染色)。D类,代表z(z)-堆叠表达Tie-2(红色染色)的TH-表达肾小球周围细胞(绿色染色)的共聚焦数字图像。箭头表示三重标记区域。Hoechst 33342染色(蓝色)用于观察细胞核。比例尺,20μm。

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