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.2009年8月;136(16):2767-77.
doi:10.1242/dev.034454。

尖叶极性激酶aPKC作为核决定因子发挥作用,并在爪蟾初级神经发生过程中调节细胞增殖和命运

附属公司

尖叶极性激酶aPKC作为核决定因子发挥作用,并在爪蟾初级神经发生过程中调节细胞增殖和命运

尼丁·萨伯瓦尔等。 开发. 2009年8月.

摘要

在非洲爪蟾的神经发生过程中,顶端极化的浅层和非极性深层细胞承担着不同的命运:深层细胞成为初级神经元,而浅层细胞作为祖细胞。目前尚不清楚影响细胞极性的蛋白质是否也影响细胞命运,以及膜极性信息如何传递到细胞核。在这里,我们研究了极性成分,即顶部富集的aPKC和基底外侧Lgl2,在原发性神经发生中的作用。我们报道了一种膜栓形式的aPKC(aPKC-CAAX)抑制初级神经发生并促进细胞增殖。出乎意料的是,内源性aPKC和aPKC-CAAX都显示出一些核定位。与核定位信号融合的组成性活性aPKC与aPKC-CAAX具有相同的表型效应,因为它抑制神经发生并促进增殖。相反,以限制在细胞核内的显性负性形式抑制内源性aPKC可增强初级神经发生。这些观察结果表明,aPKC在细胞核中具有一种功能,对初级神经发生期间的细胞命运规范至关重要。在一项补充实验中,基底外侧Lgl2的过度表达导致浅表细胞去极化和内化,当补充神经前因子时,这些细胞会形成异位神经元。这些发现表明,aPKC和Lgl2都影响细胞命运,但aPKC本身是一个核决定因子,可能从细胞膜穿梭到细胞核以控制细胞增殖和命运;Lgl2过度表达导致上皮细胞极性的丧失会改变细胞的位置,并允许改变细胞命运。

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图1。
图1。
aPKC过度表达对大鼠原发性神经发生的影响爪蟾. (A类)各种aPKC的示意图SV40NLS,来自SV40的核定位信号;CAAX,丙酰化信号。(B类)mRNA用于aPKC公司(1纳克),aPKC-CT(0.5克),aPKC-CAAX公司(0.25-0.5克),NLS-aPKC(1 ng)和NLS-aPKC-CT单方面注射(0.25-0.5 ng)与一起lacZ公司mRNA(0.25ng)和胚胎用in分析原位杂交N-微管蛋白表达式。仅限aPKC-CAAX公司NLS-aPKC-CT对初级神经发生(箭头)。比例尺:250μm。
图2。
图2。
aPKC构建体的亚细胞定位和表达。(A类)切片上使用抗aPKC抗体(绿色)的免疫组织化学显示st.10.5的外胚层爪蟾胚胎(顶端朝上)非注入控制(左)或注入aPKC-CAAX公司NLS-aPKC-CTmRNA。箭头表示核染色。(B类)转染HeLa细胞的免疫细胞化学用抗aPKC(红色)和抗GFP(绿色)抗体进行检测。细胞核是蓝色的(DAPI染色)。(C类)用核裂解物进行Western blot分析如图所示,用HA标记的构建物转染HeLa细胞,并用抗aPKC和抗HA-抗体。内源性aPKC显示一些细胞核定位,如抗aPKC抗体所示,但HA-标记aPKC-CAAX如抗HA所示,显示出比HA-aPKC更大的核蓄积抗体。P95和微管蛋白用作核和细胞质对照,分别是。(D类)用核裂解物进行Western blot分析标准10.5爪蟾如图所示,注射HA标记构建物的胚胎并用抗HA和抗aPKC抗体进行印迹。HA-tagged aPKC和aPKC-CAAX显示核聚积。层粘连蛋白和微管蛋白被用作细胞核和细胞质对照。(E类)表达式分析使用HeLa细胞的全细胞裂解物过度表达多种aPKC结构展示。GFP,转染和装载控制。比例尺:50μm in A;B中250μm。
图3。
图3。
显性负性aPKC结构过度表达对原发性肝癌的影响神经发生。(A类)使用的PKC的两种主要负形式。(B类,C类)爪蟾胚胎单侧注射HA蛋白激酶C NT CAAXNLS-aPKC-NT-HAmRNA被处理用于(B) 用抗HA(绿色)和抗aPKC(红色)抗体,或用于st.16原位杂交的(C)N-微管蛋白表达式。而HA-aPKC-NT-CAAX主要表现为NLS-aPKC-NT-HA显示皮质染色伴弱核定位仅核定位(B)。两者过度表达显性负性增强神经发生(C)。箭头指向核染色(B) 、异位神经元(C,上排)和表浅异位神经元神经外胚层(C,下一排,中间面板插图)。虚线(C,下一行)指示外胚层和中胚层之间的边界。N、 脊索。比例尺:B中为50μm;C中1 mm,上排;C中500μm,下一行。
图4。
图4。
过度表达aPKC结构对表皮细胞表达的影响和深层标记。st.16的整体安装和截面爪蟾胚胎显示原位杂交(A类)的浅表外胚层标记尿斑蛋白1B和(B类)深渊外胚层标记胸腺素α原.虚线表示外胚层(上图)和中胚层(下图)之间的边界。两个外胚层注入任何一种后,层都会变厚aPKC CAAX公司NLS-aPKC-CTmRNA。n个,分析的胚胎总数。比例尺:250μm。
图5。
图5。
过度表达aPKC结构对细胞增殖的影响。(A类)Neurula期爪蟾过度表达aPKC-CAAX和NLS-aPKC-CT显示N-微管蛋白表达式和a增厚的外胚层(箭头)。(B类)磷甾酮H3的定量(PH3)-相对于总核数的正核每组至少有三个胚胎,每个胚胎至少有五个切片。(C类)注射aPKC-CAAX和NLS-aPKC-CT的st.10.5胚胎切片与抗PH3共同免疫染色(DIC图像中为黑色,顶行为红色底部行)和抗aPKC(绿色,位于中间和底部行)抗体。切片显示外胚层多层增厚,PH3染色增强外胚层的两层。底部一行显示较高的中间一行放大,抗aPKC和抗PH3。比例尺:250μm in A;50μm(单位:C)。
图6。
图6。
过度表达aPKC-CAAX或NLS-aPKC-CT对神经元的影响原肠胚形成期间出生的人口。 爪蟾胚胎在2细胞期单侧注射PKC-CAAX或NLS-aPKC-CT,BrdU在st.10.5饱和,并对BrdU和st.25尾芽切片上的神经元分化标记物X-MyT1。(A类)顶行显示抗aPKC染色(绿色),细胞核呈蓝色(DAPI),用于区分PKC-CAAX注射侧和非注射侧和NLS-aPKC-CT注射。最下面一行显示相邻部分共染色BrdU(红色)和X-MyT1(绿色)。神经祖细胞仅对BrdU阳性并且出现红色,BrdU标记后出生的神经元被共同标记并出现橙色(箭头),出现st.10.5(BrdU饱和)之前出生的神经元绿色。st.10.5(绿色)之前出生的神经元数量在之后减少任何一种PKC结构的过度表达。圆圈中的虚线描绘神经管和直虚线标志着神经的中线管。(B类)A.结果的量化。
图7。
图7。
的影响液化天然气2原发性神经发生过度表达。的过度表达液化天然气2(1 ng)对初级神经元标记N-微管蛋白(n个=35) (D-F公司)由与对照胚胎注射lacZ公司仅mRNA(0.25ng、,n个=32) (A至C). 但什么时候液化天然气2与共同表达前神经原因子X-ngnr-1号机组(0.25纳克,n个=26)(J-L公司),异位初级神经元位于中间位置在浅层和深层之间(L,箭头),而胚胎注射具有X-ngnr-1型独自一人(n个=41) (G-I型)显示异位神经发生仅发生在神经外胚层的深层(I,箭头)。另请注意缺少lacZ公司胚胎浅层细胞的染色注入液化天然气2X-ngnr-1号机组(L,箭头)具有lacZ公司(C) 或X-ngnr-1号机组(一) 注射胚胎,表明Lgl2导致表层细胞内化的可能性过度表达。比例尺:250μm。
图8。
图8。
表达Lgl2的细胞内化并参与初级神经发生。(A类)表达GFPLgl2的细胞在神经突期的内外外胚层爪蟾胚胎通过内化试验进行评估(参见材料和方法详细信息),涉及到表达GFPLgl2的谱系标记个体在囊胚期(a,b)通过注射微量鲁比(Micro-Ruby)获得外细胞。分数内层微红色标记细胞总数标记细胞在GFPLgl2型-注射胚胎的比较对照胚胎(c,d)。(B类)胚胎的时间推移图像过表达GFPLgl2,表明在浅表细胞(顶端色素沉着,箭头a)及随后这些细胞在原肠胚中期(g-j)的内化。(C类)收件人确定GFPLgl2过度表达是否导致内化细胞有助于增加神经发生,即基于Micro Ruby的内化检测与原位杂交相结合N-微管蛋白,作为对注射于2细胞期X-ngnr-1号机组单独或与GFPLgl2型(a-f)。条形图显示微红色标记深层细胞相对于标记总数GFPLgl2型联合注射,约76%平均而言,这些细胞N-微管蛋白积极的。比例尺:B中500μm;50μm(单位:C)。

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引用人

工具书类

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