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.2009年2月6日;284(6):3650-62.
doi:10.1074/jbc。M804935200。 Epub 2008年12月8日。

分泌的三叶因子2激活上皮和淋巴细胞癌细胞系中的CXCR4受体

附属公司

分泌的三叶因子2激活上皮和淋巴细胞癌细胞系中的CXCR4受体

Zinaida Dubeykovskaya公司等。 生物化学杂志. .

摘要

分泌型三叶因子家族2(TFF2)蛋白通过加强和稳定粘蛋白凝胶、刺激上皮修复和抑制相关炎症,有助于保护胃肠粘膜免受损伤。虽然三叶因子已被证明能激活信号通路,但没有细胞表面受体与三叶肽信号直接相关。在这里,我们证明了TFF2肽通过CXCR4趋化因子受体在癌细胞系中激活信号的能力。我们发现小鼠和人类TFF2蛋白(约0.5微米)激活淋巴母细胞Jurkat细胞中的Ca2+信号,这些信号可以通过受体脱敏(使用SDF-1α)或使用特异性拮抗剂AMD3100或抗CXCR4抗体进行预处理而消除。TFF2预处理Jurkat细胞可降低Ca2+升高和对SDF-1α的趋化反应。此外,CXCR4阴性的胃上皮细胞系AGS在表达CXCR4受体后对TFF2治疗产生高度反应。TFF2诱导胃癌和胰腺癌细胞KATO III和AsPC-1中丝裂原活化蛋白激酶的激活也依赖于CXCR4受体的存在。最后,我们证明了TFF2蛋白对表达CXCR4的AGS胃癌细胞株的显著增殖作用。总的来说,这些数据确定CXCR4是TFF2的真正信号受体,并表明TFF2可能通过一种机制调节体内免疫和致瘤反应。

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数字

图1。
图1。
内源性和外源性TFF2抑制Jurkat细胞趋化性SDF-1型α.顶部,Jurkat细胞携带空逆转录病毒(pMIG;实心钢筋)或表达mTFF2的细胞;空的钢筋)在趋化试验中检测到指定浓度SDF-1的相对迁移细胞数输入计算细胞数(平均值±S.E.),并显示在纵坐标.统计上的显著差异(第页<0.003)应变之间的星号(*).底部,在趋化性试验中测试亲代Jurkat细胞SDF-1α(12.5牛顿)如上所述,但在各种重组mTFF2在移植前(15分钟)和移植过程中的浓度两个腔室。统计学显著差异(*,第页< 0.05;**,第页<0.002)指示细胞。
图2。
图2。
内源性TFF2降低Ca2+低辐射引起的通量Jurkat细胞中SDF-1α的剂量不高。Jurkat pMIG公司(蓝色线)和Jurkat pMIG-mTFF2(绿线)细胞被加载印度-1(Ca2+-传感染料)并测试细胞内钙2+水平(蓝色/紫色荧光比率)5n刺激(顶部)或50 n(底部)流式细胞术检测SDF-1α4分钟。相同的单元格缓冲区挑战如下所示红色(pMIG)或黑色(pMIG-mTFF2)线(基线). 趋化因子(或缓冲液)在指定的时间点添加箭头. The顶部底部数字表示同一实验的数据。DAPI公司,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚。
图3。
图3。
重组小鼠TFF2刺激Ca2+Jurkat流量细胞。 顶部,细胞装载Indo-1染料并测试2+刺激后流式细胞仪的流量(箭头)带有SDF-1α(12.5 n)或mTFF2(300和600n)或缓冲器(BL公司)持续4分钟。底部,加利福尼亚州2+通量用不同剂量的小鼠刺激(菱形的)或人类(广场)重组TFF2肽在Jurkat细胞中通过流式细胞术同上。钙的最大增加2+水平高于各自的基础水平测试浓度为展示。绘制的趋势线是使用Microsoft Excel创建的。DAPI公司,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚。
图4。
图4。
三叶肽和SDF-1激活不同的信号通路Jurkat细胞。细胞在无血清培养基中饥饿过夜,然后用mTFF2(600 n)刺激)或SDF-1α(12.5 n)对于所指示的时间。蛋白质提取物的制备和分析通过Western blot激活/磷酸化ERK1/2或AKT(Thr-308)激酶使用相应抗体进行分析。带防盗功能的最终检测用相应的膜进行ERK1/2或抗总AKT抗体确保样品装载均匀。帕克特,磷酸-AKT;pERK公司,磷酸-ERK。
图5。
图5。
TFF2-和SDF-1依赖性的同源和异源脱敏Jurkat细胞中的钙信号传导。 A类,个细胞装载了2+-感应染料,并用mTFF2(600n个顶部)或SDF-1(12.5 n底部)最后用胃泌素治疗(天然气17; 100n个)在指定的时间点(箭头)在每个病例后测量细胞钙2+按流量分级细胞术(~2000个细胞/秒)10分钟。B类,加利福尼亚州2+通量是测量单位为A类,但用12.5n个SDF-1α和600 nmTFF2型(顶部)或恶习反之亦然(底部)胃泌素最后刺激(100n).数据显示为FlowJo软件创建的曲线。DAPI公司,4′,6-二氨基-2-苯基吲哚。
图6。
图6。
CXCR4受体的中和阻断TFF2诱导的Ca2+Jurkat细胞中的通量。细胞负载钙2+-传感染料是否用12G5抗体(5γ/ml)或拮抗剂AMD3100治疗(0.6 μ)用SDF-1α(12.5)刺激前15分钟n个)或mTFF2(600 n). 钙离子的测量用流式细胞术检测4分钟后的钙水平2+测定了每种刺激(有/无治疗)的水平,如图所示这个横坐标。所示的治疗并未影响健壮性2+胃泌素反应(天然气17). 数据所示(平均值±S.E.)代表了从两个数据中获得的类似数据其他实验。达皮,4′,6-二脒基-2-苯基吲哚。
图7。
图7。
TFF2激活AGS细胞中CXCR4依赖的信号转导表达趋化因子受体。AGS公司()或AGS/CXCR4-GFP(A–C)隔夜剥夺细胞血清并测试ERK1/2的磷酸化(A、 B类、和)或AKT(C类)蛋白印迹法检测激酶的磷酸特异性SDF-1α刺激后的抗体(12.5 n)或mTFF2(600牛顿). 在试验结束时,用针对总激酶的相应抗体,以确保均匀的样本装载。B类用AMD3100(0.6)预处理AGS/CXCR4细胞μ)、抗CXCR4抗体(5或10γ/ml)或同型刺激前15分钟匹配抗体(IgG;10γ/ml)。帕克特,磷酸-AKT;pERK公司,磷酸-ERK;未设置。,无刺激。
图8。
图8。
TFF2通过CXCR4刺激AGS/CXCR4细胞增殖受体。AGS公司(A类)或AGS/CXCR4(B类)电池(12×10细胞/孔)在无血清DMEM中培养三倍(+0.1%BSA),在指定的温度下有或没有TFF2、SDF-1或EGF浓度。用WST-8测定活细胞数72小时后的生长检测试剂盒。每个酒吧表示平均值±三个独立测量的S.E。具有统计学意义的刺激细胞因子促进生长(控制)由指示星号(*)在上面各自的钢筋(*,第页< 0.05;**,第页< 0.01).C类,用拮抗剂AMD3100中和CXCR4受体(AMD公司; 0.6 μ)或抗CXCR4抗体(12国集团510γ/ml)消除TFF2的生长刺激作用(600牛顿)和SDF-1(12.5 n)在AGS/CXCR4细胞中。这个生长效应测量如下A类.一个星号标记a统计上显著的阻塞效应(第页<0.05)未经处理但受到刺激的细胞。,TFF2(600 n),SDF-1(12.5牛顿)和EGF(10 ng/ml)刺激布尔德乌尔德(溴化铀)在AGS/CXCR4细胞中。细胞被电镀并生长为但新合成DNA中的BrdUrd掺入在21小时后进行评估之后如“实验程序”所述。每个酒吧代表三个重复的平均值±S.E决定。(*,第页< 0.05控制值)。
图9。
图9。
TFF2激活癌细胞中CXCR4信号,天然表达趋化因子受体。胃KATO III(A类C类)和胰腺AsPC-1(B类)对细胞进行ERK1/2和SDF-1刺激后的AKT(Thr-308)磷酸化(12.5n)或mTFF2(600 n)如上所示正确的每个面板的通过Western blot。C类,CXCR4中和AMD3100受体(0.6μ)或特定(12G5;10γ/ml)但不是同种抗体(IgG;10γ/ml)通过mTFF2(600牛顿; 5分钟)在KATO III中(C类)或AsPC-1()单元格。帕克特,磷酸-AKT;pERK公司,磷酸-ERK。
图10。
图10。
TFF2抑制抗CXCR4 2B11抗体与Jurkat的结合细胞。细胞与藻红蛋白标记的抗CXCR4孵育(第2-5行),12G5(A类),或2B11(B类)或同型匹配(第1行,着色区域)抗体存在时不同浓度的TFF2(顶部面板)或SDF-1(中间的面板)在4°C下保持1小时。在潜伏期结束时,细胞清洗后用流式细胞仪进行分析。存在时抗体结合配体的浓度如下所示:inA类B类(顶部面板):第2行,无TFF2;第3行,12 μTFF2;第4行,60微米TFF2;在里面A类B类(中间面板):第2行,无SDF-1;第3行,5个SDF-1;第4行,25牛顿SDF-1;第5行,125牛顿SDF-1。为了清楚起见,并非所有获得的曲线都显示在顶部中间的面板。底部面板(A类B类)总结中位数荧光强度(货币金融机构)计算的细胞标记数量使用来自顶部中间面板.显示的数据(平均值±标准偏差)是三个独立实验的代表。

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