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.2005年3月28日;92(6):1165-72.
doi:10.1038/sj.bjc.6602422。

异常DNA甲基化与造血肿瘤中BNIP3基因表达沉默相关

附属机构

异常DNA甲基化与造血肿瘤中BNIP3基因表达沉默相关

M Murai先生等。 英国癌症杂志. .

摘要

缺氧是导致人类肿瘤进展和化疗耐药的关键因素。BNIP3是参与低氧诱导细胞死亡的Bcl-2蛋白家族的促凋亡成员。我们评估了BNIP3基因的表达和甲基化状态,以更好地了解其表达的表观遗传改变在造血肿瘤中的作用。在四种急性淋巴细胞白血病、一种多发性骨髓瘤和一种Burkitt淋巴瘤细胞系中检测到BNIP3转录起始点周围区域的甲基化,并且与基因沉默密切相关。用甲基转移酶抑制剂5-氮杂脱氧胞苷(5-aza2'-doxycytidine,5-aza-dC)处理后,BNIP3的表达得以恢复,这证实该基因因甲基化而表观遗传失活。值得注意的是,使用5-aza2-dC重新表达BNIP3也可以恢复甲基化细胞系中缺氧介导的细胞死亡。组蛋白H3在基因5'区的乙酰化作用(使用染色质免疫沉淀分析进行评估)与基因表达直接相关,与DNA甲基化相反。在原发性肿瘤中,BNIP3甲基化在34例急性淋巴细胞白血病中的5例(15%)、35例急性髓性白血病中的6例(17%)和14例多发性骨髓瘤中的3例(21%)中检测到。这些结果表明,5'CpG岛的异常DNA甲基化和组蛋白去乙酰化在抑制造血肿瘤中BNIP3表达中起着关键作用。

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图1
图1
BNIP3在造血肿瘤细胞系中的表达。(A类)通过RT-PCR分析一组造血肿瘤细胞系的BNIP3表达。甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)作为cDNA完整性的内部控制。相应的阴性对照(无RT放大)显示为RT阴性。使用的细胞系和组织显示在顶部。(B类)低氧对BNIP3表达的影响。使用来自常氧(20%O)细胞的cDNA进行实时PCR2,缺氧−)或缺氧(1%O2,缺氧+)条件下24小时h.根据GAPDH标准化的信号显示在Y(Y)-轴。所检查的单元格线显示在列的下方。(C类)HIF-1的Western blot分析α和BNIP3。将细胞孵育24小时常压(20%O)下h2,缺氧-)或缺氧(1%O2缺氧+)条件下,然后通过SDS–PAGE和HIF-1分离蛋白质α使用适当的抗体检测BNIP3和肌动蛋白。
图2
图2
一组造血肿瘤细胞系中BNIP3甲基化的分析。(A类)BNIP3的CpG岛;CpG位点用竖线表示。COBRA分析的区域显示为实心条。外显子1由实线上的实线框表示。转录起始点用箭头表示。(B类)造血肿瘤细胞系中BNIP3的异常甲基化。使用COBRA检测BNIP3的甲基化。凝胶下方显示了甲基化等位基因的百分比。M: 甲基化等位基因。(C类)5-aza-dC治疗前后BNIP3表达分析。细胞株治疗96h,2.0μM(M)5-氮杂-dC,然后收获,然后提取RNA。
图3
图3
BNIP3的亚硫酸氢盐测序。(A类)亚硫酸氢盐测序的代表性结果。扩增的PCR产物从凝胶中纯化,然后直接测序。所检查的细胞系显示在列的下方;U、 非甲基化CpG位点;M、 甲基化CpG位点。(B类)亚硫酸氢盐测序总结。每个圆圈代表一个CpG二核苷酸。甲基化状态:开环,未甲基化;黑眼圈,甲基化。每个病例至少有7个克隆被测序。所分析区域中的CpG站点用竖线表示(顶部)。
图4
图4
通过5-氮杂-dC治疗恢复缺氧介导的细胞凋亡。TALL1细胞用模拟或1μM(M)5-氮杂-dC用于72h,然后在常压或缺氧条件下培养96h.通过流式细胞术测定凋亡细胞的百分比。非甲基化Jurkat细胞系作为对照。
图5
图5
组蛋白去乙酰化在沉默BNIP3基因表达中的作用。(A类)DNA甲基转移酶和/或组蛋白去乙酰化酶抑制剂对BNIP3表达的影响。显示BNIP3甲基化的SupT1细胞用0.2μM(M)5-氮杂-dC,300n个M(M)TSA或两者兼而有之。(B类)组蛋白乙酰化用ChIP检测,然后用PCR检测。用抗乙酰化组蛋白H3抗体沉淀DNA进行染色质免疫沉淀分析;条形图显示组蛋白乙酰化水平,该水平由实时PCR确定,并归一化为GAPDH信号。检查的细胞系如下所示。
图6
图6
一组原发性造血肿瘤中BNIP3甲基化的分析。(A类)使用COBRA检测BNIP3的甲基化。肿瘤类型显示在凝胶上方。甲基化等位基因的百分比通过密度测定法计算,如凝胶下方所示。(B类)亚硫酸氢盐测序总结。每个圆圈代表一个CpG二核苷酸。甲基化状态:开环,未甲基化;黑眼圈,甲基化。检查的案例显示在右侧。

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