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Oncol Lett公司。2019年1月;17(1): 951–957.
2018年11月15日在线发布。 数字对象标识:10.3892/ol.2018.9709
预防性维修识别码:1994年6月31日
PMID:30655853

SNHG20可预测口腔鳞癌的预后并促进细胞生长

关联数据

数据可用性声明

摘要

越来越多的证据表明,长非编码RNA(lncRNAs)在各种肿瘤类型中发挥着重要作用,包括结直肠癌和胃癌。本研究旨在探讨lncRNA小核仁RNA宿主基因20(SNHG20)在口腔鳞癌(OSCC)进展中的作用。结果表明,与邻近的非肿瘤组织标本相比,口腔鳞癌组织标本中SNHG20的表达显著增加。口腔鳞状细胞癌组织标本中SNHG20表达的增加与肿瘤分化和肿瘤结节转移阶段有关。Kaplan-Meier分析和log-rank检验表明,较高的SNHG20表达预示着OSCC患者的总体生存率(OS)较低。多变量Cox比例风险回归分析表明,SNHG20表达增加是OSCC患者OS的独立预测因素。敲低OSCC细胞中SNHG20的表达抑制增殖。SNHG20被敲除后,OSCC细胞增殖相关蛋白增殖细胞核抗原和Ki67表达水平降低;因此,结果表明SHNG20可能是OSCC治疗的预测因子和潜在靶点。

关键词:口腔鳞癌,小核仁RNA宿主基因20,肿瘤预后,细胞增殖

介绍

头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)是最常见的肿瘤类型之一,2008年全球报告的新诊断病例超过50万例(1,2). 口腔鳞状细胞癌(OSCC)是全世界最常见的HNSCC亚型(2). 尽管该病的诊断和治疗取得了很大进展,但晚期口腔鳞癌患者的总5年生存率仍低于50%(3,4); 因此,研究有效的诊断生物标志物和治疗靶点对改善OSCC患者的预后具有重要意义。

长非编码RNA(lncRNAs)是一类大于200个核苷酸的非蛋白编码转录物,已被确定为OSCC进展的重要调节因子(5,6). 例如,lncRNA结肠癌相关转录物1(CCAT1)在口腔鳞状细胞癌中过度表达,并且据报道,口腔鳞状癌中较高的CCAT1表达可预测不良预后(7). 此外,lncRNA尿路上皮癌相关1(UCA1)通过调节WNT/β-catenin信号通路参与OSCC的进展(8). 此外,lncRNA转移相关的肺腺癌转录物1通过诱导OSCC中的上皮-间充质转化促进肿瘤生长和转移(9). lncRNA UCA1通过抑制microRNA-184(miR-184)的表达促进OSCC的增殖和顺铂抵抗(10). 上述研究表明lncRNAs参与了OSCC的进展。

定位于17q25.2的小核仁RNA宿主基因20(SNHG20)已被确定与多种肿瘤类型有关,包括结直肠癌和胃癌。SNHG20在结直肠癌中的表达显著上调,并增加细胞增殖(11). 此外,SNHG20通过抑制p21表达和调节糖原合成酶激酶-3β/β-catenin信号通路促进胃癌进展(12); 然而,SNHG20在OSCC中的作用尚不清楚。

在本研究中,与邻近的非肿瘤组织相比,OSCC组织中的SNHG20增加。较高的SNHG20表达预示着OSCC患者的总体生存率较低。此外,敲低OSCC细胞中的SNHG20抑制增殖能力;因此,结果表明SHNG20可以作为OSCC治疗的预测因子和潜在靶点。

材料和方法

临床组织标本

2008年4月至2013年7月,从上海中医药大学(中国上海)普陀医院口腔科的40名患者中获取了人体OSCC组织标本和匹配的相邻非肿瘤组织标本。切除后,立即将组织标本放入RNA中®然后将溶液(德国希尔顿Qiagen GmbH)储存在液氮中进行进一步分析。患者的临床病理因素总结如下表一所有患者均根据肿瘤淋巴结转移(TNM)和国际癌症控制联盟分类进行临床检查和分期(13). 随访时间是指从手术到最后一次随访的时间。本研究方案经上海中医药大学普陀医院伦理委员会批准,并获得所有患者的书面知情同意书。

表一。

口腔鳞癌患者SNHG20表达与临床病理特征的关系。

SNHG20表达

临床病理特征总计减少(n=20)增加(n=20)P值
年龄0.525
  ≤60221210
  >6018810
性别0.519
女性1679
雄性241311
吸烟状况0.527
没有20119
是的20911
肿瘤部位0.744
舌头1587
不含糖251213
T级0.197
T1-T2段20146
T3-T4层20614
分化(13)0.025
良好且适度23158
糟糕17512
淋巴结转移0.185
没有261511
是的1459
TNM阶段(13)0.011
I–II级22157
III–IV18513
P<0.05。SNHG20,小核仁RNA宿主基因20;肿瘤坏死因子,肿瘤结节转移。

细胞系培养

共购自中国科学院生物化学与细胞生物学研究所(中国上海)的三株人口腔鳞癌细胞系(SCC4、HN4和SCC15)和正常人口腔角质形成细胞(NHOK)细胞系。细胞保存在补充有10%胎牛血清的Dulbecco改良Eagle培养基中(均来自HyClone;GE Healthcare Life Sciences,Logan,UT,USA)。所有细胞在37°C的含5%CO的湿空气中培养2.

逆转录定量聚合酶链反应(RT-qPCR)

从组织和细胞系中分离出总RNA,包括HN4SCC4、HN4、SCC15和含三唑的NHOK细胞®试剂(Invitrogen;Thermo Fisher Scientific,Inc.,美国马萨诸塞州沃尔瑟姆)。该cDNA是通过逆转录100 ng总RNA产生的。根据制造商的协议,通过Prime Script RT试剂盒(中国大连塔卡拉生物科技有限公司)进行逆转录分析以获得互补DNA(cDNA)。用SYBR检测SNHG20的相对表达®使用Step One Plus实时PCR系统(Applied Biosystems;Thermo Fisher Scientific,Inc.)的Green Master Mix(Takara Bio,Inc.,Otsu,Japan)。GAPDH作为内源性对照。SNHG20的相对表达定量使用2-ΔΔCq方法(14). qPCR的热循环条件为:95°C 3 min,然后是40个95°C循环12秒和58°C循环40秒。引物由上海基因制药有限公司(中国上海)合成。引物序列如下:SNHG20,正向,5′-ATGGCTAAAATAGATACACCC-3′,反向,5′-GGTACAAACAGAGAGAGGA-3′;和GAPDH,正向,5′-ACAGTCAGCCATCTTCT-3′和反向,5′-GACAGCTTCCCGCCTCAG-3′。

细胞转染

从上海基因制药有限公司购买了两种抗SNHG20的小干扰RNA(siRNAs),其序列如下:si-NC,5′-GGATACGTATAGC-3′;si-SNHG20-1,5′-GCCUAGGAUCAUCCAGGGUUTT-3′;和si-SNHG20-2,5′-GCACUCACAGAGUGUAUTT-3′。当细胞融合率达到80–90%时,用脂质体转染100 nm硅阴性对照(si-NC)、si-SNHG20-1或si-SNHG20-2到SCC4或SCC15细胞®2000试剂(Invitrogen;Thermo Fisher Scientific,Inc.),根据制造商的协议。转染后48小时收集细胞。

细胞增殖试验

使用细胞计数试剂盒-8(CCK-8;中国南通贝尤泰生物技术研究所)检测细胞增殖能力。随后,将SCC4和SCC15细胞接种到96个平板(2×103细胞/孔),并转染si-NC、si-SNHG20-1或si-SNHG-20-2。细胞转染后1、2、3和4天,使用10µl CCK-8试剂对细胞进行染色。在37°C下培养2小时后,使用微孔板阅读器(Enspire 2300 Maltilabel reader;PerkinElmer,Inc.,Waltham,MA,USA)测量细胞增殖能力,并在450 nm处测量样品的吸光度。

集落形成分析

每组转染细胞接种于12孔板(5×102细胞/孔),并在含5%CO的湿空气中37°C培养14天2随后,菌落在室温下用100%甲醇固定20分钟,在室温下使用0.1%结晶紫染色20分钟。最后,在X71荧光显微镜下对细胞进行计数和成像(放大倍数为×200;日本东京奥林巴斯公司)。

蛋白质印迹分析

SCC4和SCC15细胞用放射免疫沉淀分析缓冲液(Beyotime生物技术研究所)进行分析,并根据制造商的协议,使用双辛酸蛋白分析试剂盒(Sigma-Aldrich;德国达姆施塔特Merck KGaA)进行定量。A.在10%SDS-PAGE电泳上分离出总共20µg总蛋白裂解物,然后转移到聚偏氟乙烯膜(EMD Millipore,Billerica,MA,USA)。使用5%的游离脂肪乳在室温下封闭膜1小时,然后与抗增殖细胞核抗原(PCNA)(分类号ab92552;稀释度1:3000;Abcam,英国剑桥)、抗Ki67(分类号ab15580;稀释度:1:3000;Abcam)和抗GAPDH(分类号sc-20358,稀释度:1:1000;Santa Cruz Biotechnology,Inc.,Dallas,CA,USA)抗体在4°C下过夜。随后,在室温下用与辣根过氧化物酶(稀释度为1:5000;类别号为ab97040;Abcam)结合的二级抗体抗鼠IgG孵育细胞膜2小时,并用增强化学发光检测系统(GE,Fairfield,CT,USA)观察蛋白印迹。使用ImageJ 1.45S软件(美国国立卫生研究院,马里兰州贝塞斯达)对蛋白质条带进行可视化。

统计分析

本研究中的数据分析使用SPSS 20.0(IBM Corp.,Armonk,NY,USA)进行。结果显示为平均值±标准偏差。使用χ2测试。采用Student t检验或单因素方差分析(ANOVA)以及Student-Newman-Keuls-q检验分析各组间差异的显著性。P<0.05被认为表明存在统计学上的显著差异。

结果

SNHG20在口腔鳞癌组织中的表达增加与组织分化和TNM分期有关

检测SNHG20在40例人口腔鳞癌组织标本和匹配的邻近非肿瘤组织标本中的表达。如所示图1A与匹配的相邻非肿瘤组织标本相比,OSCC组织标本中SNHG20的表达显著增加(P<0.05)。此外,与NHOK细胞系相比,SNHG20在三种OSCC细胞系(SCC4、HN4和SCC15)中的表达显著增加(P<0.05;图1B). 为了了解SNHG20在患者中的表达的临床意义,用χ2测试。结果表明,SNHG20过度表达与组织分化减少和晚期TNM分期显著相关(III-IV期;P<0.05;表一) (13).

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在OSCC组织中检测到SNHG20表达增加,并与OS较差有关。(A) 与RT-qPCR检测的相邻非肿瘤组织相比,OSCC组织中SNHG20的表达显著增加。(B) 与NHOK细胞系相比,SNHG20在三种人类OSCC细胞系(SCC4、HN4和SCC15)中的表达显著增加。(C) SNHG20表达对患者OS影响的Kaplan-Meier分析。(D) 当SCC4和SCC15细胞转染si-NC、si-SNHG20-1或si-SNHG10-2时,用RT-qPCR检测SNHG20的相对表达。误差条表示≥3个独立实验的平均值±标准偏差,*与si-NC、RT-qPCR、逆转录定量聚合酶链反应相比,P<0.05;口腔鳞癌;SNHG20,小核仁RNA宿主基因20;NHOK,正常人口腔角质形成细胞;si-NC,小干扰阴性对照;OS,整体生存率。

SNHG20表达增加是OSCC患者总生存期(OS)的预测因子

生存图采用Kaplan-Meier方法进行绘制,并与对数秩检验进行比较。结果表明,与SNHG20表达降低的患者相比,OSCC患者SNHG20-表达增加降低了他们的OS(图1C). 单因素分析结果表明,肿瘤分化不良、临床分期晚期和SNHG20表达增加是OSCC患者OS的独立预测因素,且这些相关性显著(P<0.05;表二). 此外,多变量Cox比例风险回归分析表明,肿瘤分化不良、临床分期晚期和SNHG20表达增加是OSCC患者OS的独立预测因素,且这些相关性显著(P<0.05;表二); 因此,这些结果表明SNHG20表达增加可能是OSCC患者OS的独立预测因子。

表二:。

口腔鳞癌患者SNHG20表达和OS的单变量和多变量Cox比例风险分析。

单变量Cox分析多元Cox分析


临床病理特征RR(95%置信区间)P值RR(95%置信区间)P值
年龄0.788 (0.355–1.477)0.655
性别1.088 (0.546–1.877)0.565
吸烟状况0.927 (0.443–1.788)0.588
肿瘤部位1.156 (0.577–1.993)0.422
不含糖0.655 (0.301–1.444)0.723
T级0.756 (0.404–1.466)0.688
分化(13)2.131 (1.587–2.977)0.0011.896 (1.448–2.745)0.002
淋巴结转移1.223(0.779–1.987)0.332
TNM阶段(13)2.289 (1.642–3.224)0.0011.966 (1.246–3.009)0.001
SNHG20系列2.556 (1.822–3.663)0.0012.077 (1.388–3.244)0.001
P<0.05。肿瘤坏死因子(TNM)、肿瘤结节转移;SNHG20;小核仁RNA宿主基因20;CI,置信区间;RR,相对风险。

SNHG20表达减少抑制细胞增殖

还研究了SNHG20表达对OSCC细胞增殖的影响。在两个SNHG20表达增加的OSCC细胞系(SCC4和SCC15细胞)中,SNHG20-表达被抑制。两种siRNAs的敲除效率增加,如图所示图1D采用CCK-8细胞增殖和细胞集落形成实验检测细胞增殖能力。CCK-8结果表明,SNHG20表达降低显著抑制SCC4和SCC15细胞的增殖能力,与各自的阴性对照组相比(P<0.05;图2A和B). 此外,集落形成实验结果表明,与各自的阴性对照组相比,SNHG20表达降低显著减少SCC4和SCC15细胞集落的数量(P<0.05;图2C和D). 此外,与各自的阴性对照组相比,SNHG20敲除下调了SCC4和SCC15细胞中PCNA和Ki67的表达(图3A-D). 目前的结果表明,SNHG20表达降低抑制了细胞增殖。

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SNHG20表达减少抑制细胞增殖。采用细胞计数试剂盒-8细胞增殖试验检测(A)SCC4和(B)SCC15细胞转染si-NC、si-SNHG20-1或si-SNHG20-2后的细胞增殖能力。采用细胞集落形成实验检测(C)SCC4和(D)SCC15细胞转染si-NC、si-SNHG20-1或si-SNHG20-2后的细胞增殖能力。误差条表示与≥3个独立实验的平均值±标准偏差,*与si-NC.SNHG20、小核仁RNA宿主基因20相比,P<0.05;si-NC,小干扰阴性对照;外径,光密度。

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SNHG20表达减少抑制细胞增殖相关蛋白PCNA和Ki67的表达。(A) 用si-NC、si-SNHG20-1和si-SNHG20-2转染SCC4细胞,用western blot分析检测PCNA和Ki67的表达。(B) 转染si-NC、si-SNHG20-1和si-SNHG20-2后SCC4细胞的蛋白质定量分析*与si-NC相比,P<0.05。(C)用si-NC、si-SNHG20-1或si-SNHG20-2转染SCC15细胞时,用western blot分析检测PCNA和Ki67的表达。(D) 转染si-NC、si-SNHG20-1和si-SNHG20-2的SCC15细胞的蛋白质定量分析*与si-NC、PCNA、增殖细胞核抗原相比P<0.05;SNHG20,小核仁RNA宿主基因20;si-NC,小干扰阴性对照。

讨论

最近的证据表明,lncRNA作为调节分子介导细胞过程,包括染色质重塑、转录、转录后修饰和信号转导(15,16). lncRNAs可影响细胞增殖、细胞凋亡、分化和侵袭,在生物过程中发挥重要作用(17,18). lncRNAs在口腔鳞状细胞癌进展中的作用可以为该病的诊断和治疗提供策略。SNHG20是一种最近确定的RNA分子,被确定为多种肿瘤类型中的癌基因,包括结直肠癌和胃癌。然而,据我们所知,SHNG20在OSCC中的预后价值和功能作用尚不清楚。在本研究中,结果表明,与邻近的非肿瘤组织标本相比,口腔鳞癌组织标本中SNHG20的表达增加。SNHG20过度表达与组织分化减少和临床晚期相关。多变量Cox比例风险回归分析表明,SNHG20表达增加是OSCC患者OS的独立预测因子。

在之前的研究中,与相应的非肿瘤组织相比,SNHG20在结直肠癌组织中的表达增加,SNHG20的高表达与结直肠癌患者的晚期TNM分期显著相关(11). 此外,SNHG20的上调预测肝细胞癌患者的总体生存率较低。SK-Hep-1细胞中SNHG20的敲除显著抑制细胞增殖、迁移和侵袭(19). SNHG20通过调节miR-495促进乳腺癌细胞增殖、侵袭和迁移(20). 一致地,目前的结果表明,SNHG20表达的减少抑制了细胞增殖能力和细胞集落形成能力。此外,SNHG20的表达降低降低了OSCC细胞中PCNA和Ki67的表达。PCNA和Ki67是细胞增殖标记物,其合成速率与细胞增殖和DNA合成速率直接相关(21). 本研究结果表明,SNHG20可能通过潜在机制影响PCNA和Ki67的表达。这些结果表明,SNHG20表达降低抑制了细胞增殖。此外,在未来体内应进行实验,以证明SNHG20在OSCC中的作用。

总之,在本研究中,证实了SNHG20在口腔鳞癌组织和细胞中的表达升高。SNHG20表达增加可作为OSCC组织的预后预测因子。此外,SNHG20表达降低可抑制OSCC的细胞增殖;因此,这些结果表明SNHG20可以作为OSCC的预后预测因子和OSCC治疗的靶点。此外,OSCC进展的确切分子机制需要进一步研究。

致谢

不适用。

基金

没有收到资金。

数据和材料的可用性

本研究中使用和/或分析的数据集可根据合理要求从相应作者处获得。

作者的贡献

PG对研究的设计做出了贡献,并负责项目设计、组织、手稿撰写、实验进度监督和待出版版本的最终批准。PG、RF和TG进行了分子实验。所有作者都阅读并批准了手稿的最终版本。

道德批准和参与同意

本研究方案经上海中医药大学普陀医院伦理委员会批准,并获得所有患者的书面知情同意书。

患者同意发布

所有患者均获得书面知情同意书并同意发表。

竞争性利益

作者声明,他们没有相互竞争的利益。

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