1.简介
对气候、能源需求增加、化石燃料长期供应有限的担忧以及道德考虑,促进了对更可持续的木质纤维素“第二代”生物燃料的研究。它们依赖于从柳枝稷等原料中解构纤维素和半纤维素单糖。这个过程中的一个步骤,糖化,使用热稳定性和化学稳定性强的糖苷的混合物水解酶类(GH)。这些混合物通常利用内切葡聚糖酶的组合活性(酶代码EC3.2.1.4),β-葡萄糖苷酶(EC 3.2.1.21)和纤维二水解酶(EC 3.2.1.91和EC 3.2.1.176;CBH)。碳水化合物活性酶数据库(CAZy;https://www.cazy.org)目前根据氨基酸序列的相似性列出了153个不同的GH家族。这种分类有助于根据独立于底物特异性的结构、机械和进化方面对GH进行分组。
J30,一种具有抗第页-硝基苯纤维二糖(第页NPC),其主要产物是纤维二糖,通过来自适应柳枝稷的微生物群落(Allgaier)的宏基因组数据进行鉴定和分析等。, 2010; 德哈塞勒等。, 2013; 格拉登等。, 2014). 它可能的来源是适度嗜热的细菌复合热杆菌KWC4,其催化最佳温度为50℃。它被注释为GH家族9成员,由一个N端Ig样结构域和一个C端组成催化域。基于dbCAN的初始注释表明,类Ig结构域中存在碳水化合物结合模块(CBM;例如,CBM家族30基序)。然而,最新的dbCAN2元服务器(https://cys.bios.niu.edu/dbCAN2)不识别CBM。具有54%的序列同源性T.堆肥是J30的最接近同源物。在那些具有溶解结构的材料中,树枝状堆肥CelG(LC-CelG;PDB条目3x17像素; 奥卡诺等。, 2015)最相似的是41%的身份,其次是Cel9A酸性嗜酸脂环杆菌(AaCel9A;PDB条目3盎司8; 佩雷拉等。, 2009)和Cel9A来自热梭菌(CtCel9A;PDB条目1个信用证; M.B.Lascombe、H.Souchon、M.Juy和P.M.Alzari,未发表作品),分别具有32%和31%的身份。在蛋白质数据库中发现的不太相似的家族成员中(伯曼等。, 2000)是没有类Ig结构域的晶体结构,以及携带C末端相邻族3 CBM的晶体结构(Okano)等。, 2015).
我们已经解决了J30到1.7的结构 奥分辨率。这种酶是GH家族9成员中仅有的三种结构之一,不含结构钙2+和锌2+离子,其他是来自副溶血性弧菌(PDB条目3小时7升; 纽约SGX结构基因组研究中心,未发表的工作)和来自深发光杆菌(PpGlcNase;PDB条目5平方厘米; 本田等。, 2016). 在具有解决结构的其他构件中,那些表现出比J30高得多的耐热性的构件包含一到四个结构金属离子(Schubot等。2004年; 凯萨武鲁等。, 2012; 奥卡诺等。, 2015; 埃克特等。, 2002; 布鲁内基等。, 2013; 肖沃等。, 1995). 鉴于CtCel9A通过金属离子结合(Chauvaux等。, 1995, 1990),我们假设Zn的引入2+离子可以提高J30的热稳定性。使用CtCel9A晶体结构作为参考模型并比较其Zn的几何形状2+-与J30内相应片段的结合位点,我们创造了一种称为J30 CCH的突变体(表示突变的残基身份:A98C类,G114C类和Y143H(H)). 这个晶体结构三个突变体中的一个突变体成功地引入了锌2+预期结合部位的离子。我们的圆二色性(CD)和差示扫描荧光法(DSF)数据表明J30的熔化温度成功升高。对酶变体的酶分析表明,催化最佳温度提高了5-10°C。我们的数据支持结构金属离子在促进热稳定性方面的拟议作用(Juy等。, 1992)并强调了金属引入作为生物量糖化及其他过程中设计强健蛋白质的工具的适用性(布朗纳等。, 1994; 保加利亚等。, 2015).
2.方法
2.1. 分子生物学、蛋白质表达和纯化
使用QuikChange Lightning Multi-Site-Directed Mutagenesis Kit(安捷伦科技,目录号210515)在DNA水平将A98C、G114C和Y143H突变导入质粒pBIL-J30。
野生型J30(J30 wt)和J30 CCH分别携带C末端多组氨酸标签,于大肠杆菌在含有50 微克 毫升−1卡那霉素和2 米M(M)硫酸镁4在200 转速 最小值−1.细菌悬浮液在37°C下培养,然后用0.5 米M(M)OD处的IPTG600 纳米4(J30 wt)或1(J30 CCH),然后在20°C下。蛋白质表达持续17 h(J30 wt)或19 h(J30 CCH)直到OD600 纳米达到20(J30 wt)或20.5(J30 CCH)。
细胞在0.15的缓冲液中溶解 M(M)氯化钠,25 米M(M)HEPES pH 7.4,1 米M(M)PMSF使用Avestin乳胶Flex-C3均质机。使用Ala KTAexplorer 100 Air通过镍亲和力(5 ml HisTrap HP或FF)和尺寸排除色谱法(Superdex 200 10/300 GL,均来自GE Healthcare Life Sciences)。用于生产和隔离J30 CCH的所有介质和缓冲液也包含10 µM(M)氯化锌2.
2.2. 结晶
使用以下筛网对野生型J30进行初始稀疏基质结晶筛选:Berkeley(来自Lawrence Berkeley国家实验室;Pereira等。, 2017)、Crystal Screen、Index、Natrix、PEG/Ion、PEGRx、SaltRx(全部来自Hampton Research)和MCSG-1(来自Microlysis)(Jancarik&Kim,1991年). 他们使用凤凰机器人(Art-Robbins Instruments)进行设置。浓度为12 毫克 毫升−1纯化的酶,蛋白质在0.1 M(M)二水柠檬酸三钠,pH 5,15%(w个/v(v))2-丙醇,10%(w个/v(v))聚乙二醇10 000.在3 采用坐滴蒸汽扩散法测定了室温下的生长速度。以相同的方式制备了J30 CCH晶体。所有液滴由1个组成 µl蛋白质溶液和0.5 µl储液罐溶液。
2.3. 数据收集和处理
晶体转移了20%(v(v)/v(v))甘油和液氮闪冷。在斯坦福同步辐射光源(SSRL)、SLAC国家加速器实验室的束线7-1上收集了本地J30数据集,在劳伦斯伯克利国家实验室先进光源(ALS)的伯克利结构生物学中心束线5.0.1上记录了J30 CCH衍射数据。所有数据均使用振荡角测量Δφ1°和ADSC Quantum 315r探测器。
所有数据集都使用-3dii公司中的选项夏2(2010年冬季; 卡布施,2010年; 埃文斯,2006). 阶段划分由执行分子置换使用相位器(麦考伊等。, 2007)来自菲尼克斯一套程序(亚当斯等。, 2010). CtCel9A(PDB条目1个信用证; 31%序列一致性)作为J30 wt的搜索模型(TFZ最高得分为19.7),然后用于生成J30 CCH图。模型改进采用交替的手动建模,使用库特(埃姆斯利等。, 2010)和自动化结构精细化通过菲尼克斯定义(黄嘌呤等。, 2012). 每个数据集中随机选择2000次反射进行交叉验证。后来的迭代包括TLS精细化使用从中获取的TLS组TLSMD公司web服务器(Painter&Merritt,2006一,b条). 所有数据收集、阶段划分和细化统计总结见表1。显示结构模型的图形是使用PyMOL公司(v.1.7.2.1;薛定谔)。
| J30重量 | J30 CCH公司 | PDB代码 | 5小时 | 5铀2氧化物 | 数据收集统计 | 光束线 | 7-1,SSRL | 5.0.1、ALS | 波长(Ω) | 1.1271 | 0.9774 | 晶体到探测器的距离(mm) | 200 | 180 | φ收集/Δφ(°) | 120/1 | 180/1 | 暴露时间(s) | 三 | 1 | “空间”组 | P(P)6522 | P(P)6522 | 单位-细胞参数 | 一,b条,c(c)(Å) | 91.06, 91.06, 316.66 | 90.96, 90.96, 316.32 | α,β,γ(°) | 90, 90, 120 | 90, 90, 120 | 分辨率(Ω) | 76.52–1.70 (1.74–1.70) | 70.51–1.46 (1.50–1.46) | 测量反射 | 1220921 (79778) | 2888558 (210630) | 独特的反射 | 86505 (6276) | 134366 (9693) | 完整性(%) | 100.0 (100.0) | 99.8 (99.2) | 多重性 | 14.1 (12.7) | 21.5 (21.7) | R(右)合并†(%) | 13.5 (131.3) | 13.8 (170.4) | 〈我/σ(我) | 19.3(2.2) | 17.8 (2.3) | 科科斯群岛1/2(%) | 99.9 (70.6) | 99.9 (71.5) | 威尔逊B类系数(Ω2) | 15.9 | 13.4 | 细化和模型统计 | 分辨率(Ω) | 55.9–1.70 (1.74–1.70) | 70.51–1.46 (1.50–1.46) | R(右)晶体‡(%) | 14.09 (23.39) | 13.97 (22.81) | R(右)自由的§(%) | 16.57 (25.51) | 15.12 (24.98) | 分子数量 | 蛋白质 | 1 | 1 | 水 | 765 | 800 | 柠檬酸盐 | 1 | 1 | 甘油 | 三 | 4 | 锌2+ | 0 | 1 | 蛋白质残留物数量 | 543 | 543 | 相对标准偏差。¶ | 键长(Å) | 0.008 | 0.007 | 粘结角度(°) | 0.981 | 0.924 | 冲撞得分 | 0.23 | 0.57 | 平均各向同性B类系数(Ω2) | 总体 | 20.6 | 19.4 | 大分子 | 18 | 16.6 | 溶剂 | 34.8 | 34 | 配体 | 32.3 | 30.4 | 拉马钱德兰阴谋 | 有利地区(%) | 98 | 98 | 允许的区域(%) | 1.6 | 1.6 | 异常值(%) | 0.18 | 0.18 | 旋转器异常值(%) | 0.67 | 0.67 | | †R(右)合并=,其中我我(香港特别行政区)是反射和〈的单个测量的强度我(香港特别行政区)〉是反射的平均强度。 ‡R(右)晶体=,其中F类光突发事件和F类计算分别是观测和计算的结构系数振幅。 §R(右)自由的计算为R(右)晶体使用结构中省略的2000个随机选择的反射精细化。 ¶键角和长度的均方根偏差是基于构象依赖文库计算的(Moriarty等。, 2014, 2016). |
2.4. 差示扫描荧光法
比较J30 wt和J30 CCH的热稳定性的DSF测定在Applied Biosciences StepOnePlus实时PCR系统上进行,一式三份,在30 µl刻度,含0.5 毫克 毫升−1酶,150 米M(M)氯化钠,25 米M(M)HEPES pH值7.4,10 µM(M)氯化锌2和SYPRO橙色蛋白凝胶染色剂(生命科技,目录号S-6650),5×。在25至99°C温度下记录荧光信号。
锌2+-滴定样品由a 1制备 h将J30 CCH与150倍化学计量过量的EDTA pH 7.4孵育并透析18 h对0.15 M(M)氯化钠,25 米M(M)HEPES缓冲液pH 7.4。A 1个 毫克 毫升−1酶溶液与氯化锌孵育2在不同浓度下保持30 添加染料前min。如上所述进行DSF测定,最终浓度为0.5 毫克 毫升−1J30 CCH,0–10 µM(M)氯化锌2, 0.15 M(M)氯化钠,25 米M(M)HEPES pH 7.4,SYPRO橙色蛋白凝胶染色5倍。
2.5. 圆二色性
J30 wt和J30 CCH的熔化曲线大肠杆菌使用Jasco J-815 CD光谱仪在20至85°C的温度下记录,使用1 mm试管。检测浓度为0.1 毫克 毫升−1酶,150 米M(M)氯化钠,25 米M(M)HEPES pH值7.4,10 µM(M)氯化锌2。在200–250波长范围内记录了三次累积 nm施加0.2 nm数据间距。
2.6. 酶特异性分析
反应建立在50 µl刻度,使用15 微克 毫升−1酶,0.1 M(M)人工编码站pH值6,10 µM(M)氯化锌2和0.25 米M(M)4-硝基苯基β-D类-吡喃葡萄糖苷(第页NPG;Sigma,目录号N7006),4-硝基苯基β-D类-纤维二糖苷(第页NPC;TCI America,目录号N0867)或4-硝基苯基β-D类-纤维三糖苷(第页NPG3;Carbosynth,目录号EN04796)。阳性对照组的最终浓度为3.6 M(M)NaOH代替酶。阴性对照品含有缓冲液而不是酶,在针对碱性水解进行内部标准化之前减去。将三硅酸盐样品在50°C的Applied Biosciences Veriti 96-Well Thermal Cycler中培养,冷却至4°C,转移至96-Well透明平底板中,并与2%混合(w个/v(v))体积比为1:1的碳酸钠。入射波长为405时的吸光度 nm在分子器件SpectraMax M2上测量。
2.7. 催化分析
分析条件包括15个 微克 毫升−1酶,0.3 米M(M) 第页NPC(西格玛,目录号N5759),10 µM(M)氯化锌2, 31.3 米M(M)柠檬酸盐,根据pH值,4.7–51.1 米M(M)乳酸和28.4–59.4 米M(M)磷酸盐。100 在BioExpress GeneMate IsoFreeze PCR支架上的96个平板上建立三次µl反应,并培养30 应用生物科学Veriti 96-Well Thermal Cyclers中的min。除Beckman Coulter Biomek FX和NX外,样品冷却和传输、反应猝灭和读出步骤如上所述进行P(P)机器人被用于96周格式的所有液体处理。阴性对照组含有缓冲液而不是酶,并被减去。
3.结果
3.2. 三重突变体J30 CCH的结构
这个晶体结构J30 CCH的分辨率为1.46 Å. 电子密度与锌的存在一致2+预测位置的离子(图2b条). 金属配位由Cys98、Cys114、His115和His143的侧链介导,有效取代野生型酶中His115与Tyr143形成的一个氢键(图2一). GH家族9个结构中含有同源Zn2+-结合位点,CtCel9A,AaCel9A(Pereira等。, 2009),Cel9M来自纤维素梭菌(PDB条目国际原子能机构协会; 帕西格拉等。, 2002)和CelTC.热电偶(PDB条目2亿; 凯萨武鲁等。, 2012)共享相同的模式螯合作用,而LC-CelG的天冬氨酸残基位于J30 CCH的Cys114(补充图S1;Okano等。, 2015). 一般来说,组氨酸、酸性侧链,特别是半胱氨酸侧链是结构锌的常见配体2+离子(Pace&Weerapana,2014). 而CtCbhA在酪氨酸侧链和组氨酸残基之间含有氢键,类似于J30(Schubot等。2004年),一些GH家族9成员,包括来自短脊周氏菌(PDB条目4zg8型),丝氨酸起组氨酸的作用(Arimori等。, 2013; 沙功等。, 1997; 曼德尔曼等。, 2003; 佩特昆等。, 2015). 其他结构完全缺乏氢键,因为苯丙氨酸取代了酪氨酸(Khademi等。, 2002; 布鲁内基等。,2013年)或者有不同的脊椎褶皱,如PpGlcNase(本田等。, 2016)和几丁质酶副溶血性弧菌.锌2+离子距离为14 从活性位点中心向与结合底物还原端相对应的方向移动。主干C、N和C之间的平方根偏差α野生型和三重突变酶的晶体结构的原子数为0.094 Å,即它们实际上是相同的。在晶体结构我们观察到J30 CCH的平均各向同性较低B类比中的晶体结构J30 wt(表1). 邻近残基98、114和143的残基的局部原子位移参数显示出类似的趋势,表明通过引入Zn使突变位点稳定2+离子。
| 图2 锌2+-J30 wt和J30 CCH晶体结构中的引入位点。(一)在J30 wt中,氢键连接His115和Tyr143的侧链。在不干扰的情况下,Hα三Gly114和Ala98的侧链指向他们。(b条)晶体结构J30 CCH的基因显示成功的残基突变和Zn2+合并。金属离子通过Cys98的侧链配位(2.3 距离),Cys114(2.4 欧)、His115和His143(均为2.1 Å). |
致谢
我们感谢劳伦斯·伯克利国家实验室先进光源伯克利结构生物学中心的工作人员。我们感谢Jed Lynn和John Gladden的建议和协作精神,感谢Jeffrey Kimbrel为编程语言R提供的专家帮助。作者声明,他们与本文的内容没有利益冲突。
资金筹措信息
这项工作是美国能源部联合生物能源研究所的一部分(https://www.jbei.org)通过劳伦斯伯克利国家实验室和美国能源部签订的合同DE-AC02-05CH11231,获得美国能源部、科学办公室、生物与环境研究办公室的支持。伯克利结构生物学中心部分由美国国立卫生研究院支持,国家普通医学科学研究所。高级光源由美国能源部基础能源科学办公室科学办公室主任根据合同DE-AC02-05CH11231提供支持。SLAC国家加速器实验室斯坦福同步辐射光源的使用得到了美国能源部科学办公室基础能源科学办公室的支持,合同号为DE-AC02-76SF00515。SSRL结构分子生物学项目由DOE生物与环境研究办公室和国家卫生研究院、国家普通医学科学研究所(包括P41GM103393)支持。
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| 结构 生物学 |
国际标准编号:2059-7983
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