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.2018年9月4日;28(3):516-524.e7。
doi:10.1016/j.cmet.2018.06.008。 Epub 2018年7月5日。

线粒体编码肽MOTS-c转位到细胞核调节核基因表达以应对代谢应激

附属公司

线粒体编码肽MOTS-c转位到细胞核调节核基因表达以应对代谢应激

金敬华(Kyung Hwa Kim)等。 单元格元. .

摘要

细胞内稳态是通过线粒体和细胞核之间的通讯来协调的,细胞核是每个细胞器都拥有自己的基因组。虽然线粒体基因组由细胞核中编码的因子调节,但目前尚不清楚核基因组是否受到线粒体DNA中编码因子的积极控制。在这里,我们表明,线粒体基因组中编码的一种肽MOTS-c在代谢应激后以5'-腺苷单磷酸活化蛋白激酶(AMPK)依赖的方式转移到细胞核并调节核基因表达。在细胞核中,MOTS-c调节广泛的基因以响应葡萄糖限制,包括具有抗氧化反应元件(ARE)的基因,并与ARE调节应激反应转录因子相互作用,例如核因子红细胞2相关因子2(NFE2L2/NRF2)。我们的发现表明,线粒体和核基因组共同进化为独立编码因子,相互交叉调节,这表明有丝分裂核通讯是遗传整合的。

关键词:MOTS-c;平衡;代谢应激;线粒体;线粒体DNA;线粒体衍生肽;有丝分裂核通讯;肽;短开放阅读框(sORF);压力反应。

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C.L.是CohBar,Inc.的顾问和股东。其余作者声明没有竞争利益。

数字

图1。
图1.MOTS-c是一种可以驻留在细胞核中的线粒体编码肽
(A) 休眠HEK293细胞不同亚细胞组分内源性MOTS-c的免疫印迹。W、 全细胞裂解物;C、 细胞质;N、 细胞核;(B)通过免疫荧光显微镜检测休眠HEK293细胞中的内源性MOTS-c。原子核由白色虚线勾勒出来。(C) 免疫印迹法检测休眠HEK293细胞核提取物水平增加时内源性MOTS-C。通过中和肽竞争证实了对MOTS-c的抗体特异性。核蛋白如层粘连蛋白B1和组蛋白H2B被用作核负荷对照。(D) 通过共焦显微镜在HEK293细胞中定位外源处理的FITC-MOTS-c肽(1μM;30分钟)。(E和F)野生型(WT)和突变型的亚细胞分布模式(8YIFY公司118美国汽车协会1113遥控门锁接收器1613美国汽车协会16)通过(E)共焦显微镜(EGFP-MOTS-c)在静止HEK293细胞中标记EGFP的MOTS-c重量,EGFP-MOTS-cYIFY公司和EGFP-MOTS-c遥控门锁接收器分别)和(F)亚细胞组分的免疫印迹(M重量,男YIFY公司、和M遥控门锁接收器)。显示了代表性图像(n=3)。细胞与DAPI(细胞核)和线粒体红(线粒体)共同染色。比例尺,10μm。另请参见图S1。
图2。
图2代谢应激触发MOTS-c动态转移至细胞核
(A–G)葡萄糖限制(GR;0.5 G/L)、血清剥夺(SD;1%胎牛血清)和第三种通过(A–C)亚细胞组分免疫印迹和(D–G)免疫荧光显微镜检测−丁基过氧化氢(tBHP;100μM)。亚细胞组分在应激后0、0.5、1、3、6和24小时进行纯化,并在应激后3小时获得共焦显微镜图像。所示为代表性图像(n=3)。细胞与DAPI(细胞核)和线粒体红(线粒体)共同染色。比例尺,10μm。(H) 基于DHE的流式细胞术评估HEK293细胞(n=4)中GR(0.5 g/L)、SD(1%胎牛血清)和tBHP(100μM)对时间依赖性活性氧(ROS)产生的反应。(一) 基于MitoSOX染色的荧光激活细胞分选,以评估HEK293细胞(n=4)中对照组(DMSO;0.05%)、鱼藤酮(Rot;10μM)、GR(0.5 g/L)、SD(1%胎牛血清)和tBHP(100μM)的线粒体ROS生成。(J) tBHP(100μM)经NAC(10 mM)预处理和未经NAC预处理2小时后的亚细胞分数免疫印迹。误差条代表平均值±SEM。经Student t检验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。另请参见图S2。
图3。
图3.MOTS-c的应力诱发核移位取决于AMPK
(A和B)GR、SD和/或tBHP(100μM)处理1小时后,在应激前30分钟内使用和不使用(A)化合物c(10μM)(AMPK抑制剂)和(B)抗AMPKα的siRNA或非特异性序列(cont)处理48小时后,核MOTS-c的水平,通过亚细胞分级免疫印迹测定。(C) 二甲双胍(5 mM;左)或AICAR治疗(2 mM;右)后的MOTS-C免疫荧光染色。(D和E)用二甲双胍或AICAR处理的细胞的核组分的免疫印迹,含有或不含(D)化合物C(10μM)或(E)siRNA对抗AMPKα或非特异性序列(续)。显示了代表性图像(n=3)。细胞与DAPI(细胞核)共染色。比例尺,10μm。另请参见图S3。
图4。
图4.MOTS-c与核DNA结合并与Nrf2相互作用以调节基因表达
(A和B)内源性MOTS-c的免疫印迹,来自(A)休眠HEK293细胞和(B)有GR和无GR的HEK291和HepG2细胞的染色质提取物(3小时)。(C) 通过免疫印迹法测定GR(顶面)或tBHP(100μM;底面)后0、3和24小时HEK293细胞核提取物中抗MOTS-C抗体对NRF2的共免疫沉淀。(D) 免疫印迹法测定HEK293细胞中EGFP-MOTS-c和Myc-标记NRF2(Myc-NRF2)的共免疫沉淀。(E) 交通运输部-cYIFY公司:8YIFY公司118美国汽车协会11和pMOTS-c遥控门锁接收器:13遥控门锁接收器1613美国汽车协会16突变MOTS-c肽。用电泳迁移率变化分析(EMSA)检测MOTS-c/DNA的直接相互作用。(F) 中华绒螯蟹ARE启动子区的ChIP-qPCR分析NQO1号机组(左)和HO-1型(右)在GR(顶部面板)和tBHP(100μM;底部面板)(n=3)后0、3和24小时绑定到MOTS-c。(G) 用空载体(pEV)或MOTS-c(pMOTS-c)质粒转染HEK293细胞(n=3),对与NRF2结合的HO-1的ARE启动子区进行ChIP-qPCR分析。(H) 在HEK293细胞中用pEV或pMOTS-c转染的细胞与siRNA组合的ARE萤光素酶报告活性NRF2级或非特定对照(NS公司)(n=15)。(一) qRT-PCR分析HO-1型NQO1号机组WT或突变MOTS-c在HEK293细胞中过度表达的应答表达(n=3)。用pEV、pMOTS-c稳定转染(J和K)HEK293细胞重量,pMOTS-cYIFY公司和pMOTS-c遥控门锁接收器96小时GR+SD。通过(J)相差显微镜图像和(K)流式细胞术(n=3)评估生存率。对用MOTS-c(或空载体)转染并接受葡萄糖限制(GR)3小时(N=6)的HEK293细胞进行(L–N)RNA-seq分析。(五十) 错误发现率(FDR)<5%时,MOTS-c对GR显著差异调节基因的热图。(M) GR期间MOTS-c上调的基因重叠和真正的NRF2靶基因。(N) MOTS-c上调(顶部)和下调(底部)基因启动子中显著富集的转录因子DNA结合基序。(O)免疫印迹法测定GR(3小时)后从HEK293细胞核提取物中共免疫沉淀MOTS-c和ATF1。(P) 线粒体编码肽MOTS-c在应对代谢应激中的核作用示意图。通过Student t检验,误差条代表平均值±SEM。**p<0.01,***p<0.001。另请参见图S4和表S1和S2。

中的注释

  • 线粒体衍生肽行使核选择权。
    Mangalhara KC,Shadel GS公司。 Mangalhara KC等人。 单元格元数据。2018年9月4日;28(3):330-331. doi:10.1016/j.cmet.2018.08.017。 单元格元数据。2018 PMID:30184481

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