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.2000年8月;1(2):151-7.
doi:10.1093/embo-reports/kvd028。

转录中介因子TIF2介导的雌激素受体α激活功能AF1和AF2之间的协同作用

附属公司

转录中介因子TIF2介导的雌激素受体α激活功能AF1和AF2的协同作用

A贝内克等。 EMBO代表. 2000年8月.

摘要

雌激素受体ERα和ERβ配体结合域中的激活功能AF2通过招募核受体辅活化剂发出信号。最近的证据表明,共激活物,如转录中介因子TIF2,也与两个ER的N末端AF1功能结合并相互作用。我们已经生成了AF1或AF2相互作用不足的TIF2突变体蛋白质,并使用这些突变体来研究AF对TIF2招募和反式激活的相对贡献。我们观察到,在转染的哺乳动物细胞和体外,TIF2能够同时与分离的ERα的N-和C-末端相互作用,这表明TIF2可以桥接这两个受体结构域。TIF2与两种AF的共同作用导致转录的协同激活。因此,ERαAF1和AF2之间的协同作用是TIF2和/或p160辅活化因子家族其他成员合作招募的结果。

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数字

无
图1。本研究中使用的结构。给出了本研究中采用的主要TIF2和ERα结构的示意图。请注意,域没有按比例进行描述。右侧的western blot证实了TIF2突变蛋白在cDNA转染细胞中的表达水平与野生型TIF2相当。分子量标记的位置显示在90°旋转图像的顶部。本研究中使用的缩写为:hTIF2,人类转录中间因子2(Voegel等。, 1996); hTIF2m123,TIF2的一种突变,在所有三个LxxLL盒(Voegel等。, 1998); hTIF2ΔQ,一种缺乏富Q结构域的TIF2缺失突变体(本研究);hTIF2m123ΔQ,TIF2的双突变体,结合LxxLL到LxxAA突变和富Q缺失突变(本研究);人雌激素受体α;大写字母表示相应结构中存在的hERα的不同域;括号中是之前研究中使用的不同结构的名称。注意,与其他结构相比,hTIF2ΔQ的表达稍高(为进行western blot分析加载了等量的蛋白质)。
无
图2。TIF2有两个功能独立的ERα接口。(A类)如图所示,GST与hTIF2、hTIF2m123、hTIV2ΔQ、hTIF2m123ΔQ和纯化的GST–hERαAB(通道3),以及GST–h ERαCDEF(通道4和5)在没有和存在雌二醇(E2)的情况下的相互作用分析。野生型和突变型TIF2蛋白编码的不同cDNA为在体外翻译并随后分析蛋白质与两种ER融合蛋白的相互作用模式。使用干凝胶的自显影扫描图像生成图形。注意,考马斯染色证实GST融合蛋白的负载量相等(未显示)。(B–D)以17m-ERE-TATA-CAT构建物、不同TIF2 cDNA和hERαABC为报告物在COS-1细胞中的瞬时转染实验(B),hERαCDEF(C类)和整个hERα(D类)揭示不同TIF2突变体的转录刺激。通过ELISA测定CAT值,并借助共表达β-半乳糖苷酶的活性进行标准化。注意,为了清楚起见,在(C)中省略了在没有配体的情况下hERαCDEF的活性值。羟基三苯氧胺(OHT)是hERαCDEF的完全拮抗剂,同时也是hERα的部分激动剂,其活性在ICI164-384(ICI)存在下完全被阻断。
无
图3。TIF2可以桥接两个ER AF(A类)实验设置如所示(B). 进行与图2中类似的瞬时转染。然而,报告者选择的[5×Gal4-结合位点位于TATA元件前,指示氯霉素乙酰转移酶(17m5-TATA-CAT)的表达]对Gal4-hERαAB不起作用。再次,在存在或不存在TIF2及其突变体、VP16-hERαCDEF和柱下所示配体的情况下,对系统的活性进行了比较。(C类)实验设置示意图如所示(D类). 图2A所示为基于GST的相互作用分析。保留在体外翻译,35GST–hERαAB珠上的S标记hERαCDEF在TIF2.1蛋白(见图1)和配体的存在和不存在下测定。显示了干燥凝胶的放射自显影图。
无
图4。TIF2可以调节AF1和AF2之间的协同作用。(A类)显示了CEF细胞瞬时转染的实验装置。(B)使用指示报告者和表达载体的实际实验,类似于图2B-D。

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