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.2004年5月;1(4):287-99.
doi:10.1186/1479-7364-1-4-287。

高密度寡核苷酸阵列鉴定的全基因组DNA拷贝数变化

附属公司

高密度寡核苷酸阵列鉴定的全基因组DNA拷贝数变化

Jing Huang(黄晶)等。 人类基因组学. 2004年5月.

摘要

DNA拷贝数的变化是大多数人类癌症常见的遗传不稳定性的标志之一。以前的基于微阵列的方法已被用于识别染色体增益和损耗;然而,他们无法在单核苷酸多态性(SNP)水平上对等位基因进行基因分型。在这里,我们描述了一种新的算法,该算法使用最近开发的基于高密度寡核苷酸阵列的SNP基因分型方法,即全基因组取样分析(WGSA),以高分辨率识别全基因组染色体的得失。通过等位基因特异性杂交,在单个阵列上合成完美匹配(PM)和错配(MM)探针,WGSA同时基因型超过10000个SNP。拷贝数算法联合使用PM强度和配对PM和MM强度值之间的区分率来识别和估计遗传拷贝数变化。将来自实验样本的值与来自包含100多个正常个体的参考集的SNP特定分布进行比较,以获得统计能力。利用SNP强度的单点分析和邻接点分析,可以确定拷贝数发生统计显著变化的基因组区域。我们使用一组人类乳腺癌细胞系确定了多个扩增和缺失区域。我们使用基于定量聚合酶链反应的独立方法验证了这些结果,并发现我们的方法既敏感又特异,能够耐受肿瘤和正常DNA混合的样本。此外,通过使用参考集中已知的等位基因频率,可以确定包含连续纯合子标记的具有统计意义的基因组区间,从而可以在不需要匹配的正常对照样本的情况下检测杂合性缺失(LOH)的区域。通过SNP基因分型将LOH分析与使用单个阵列的拷贝数估计相结合,可以进一步了解基因组改变的结构。由于平均和中位数的SNP间常染色质距离分别为244千碱基(kb)和119千碱基,该方法提供了非寡核苷酸实验方法难以实现的分辨率。

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数字

图1
图1
1X、3X、4X和5X相对于2X的标准对数强度图信号强度基于302个单核苷酸多态性的两个重复的平均值,这些多态性使用国家生物技术信息中心构建33映射到X染色体。图1b将对数(拷贝数)绘制为估计对数(强度比)(C)的函数。黑点表示不同的样本(1X到5X)。红线是以对数(拷贝数)作为响应,以估计的对数强度比作为预测值的线性回归结果。蓝线表示响应的95%置信区间,即拷贝数的自然对数。
图2
图2
SK-BR-3乳腺癌细胞系99个常染色体单核苷酸多态性的结果成对散点图基于三个测量:拷贝数、显著性和阈值周期的变化(ΔCt)。显著性度量由日志表示10转化第页-从算法中导出的值。为了区分删除和放大,-log10(第页-值)在目标值高于参考平均值时使用,即表示放大率和对数10(第页-值)在目标值低于参考平均值时使用,即表示删除。副本数使用以下公式估算:C类o个第页n个u个be(电子)第页经验(0.659+0.939×(S公司˜jC类-μ^j))ΔCt表示正常DNA样本与SK-BR-3之间的差异。Ct是报告荧光通过高于基线的固定阈值时的循环数。阳性ΔCt表示扩增,而阴性ΔCt表示缺失。
图3
图3
(见对页)第8号染色体(a组)和第9号染色体(b组)分析。面板(a)和(b)左侧的图形表示拷贝数估计和基因型信息。x轴是染色体位置(国家生物技术信息中心(NCBI)建筑33)。对于每个样本,基因型信息显示在每个面板的顶部。向下的红线表示纯合基因型,而向上的绿线表示杂合基因型。每个面板显示y轴上的拷贝数估计值。垂直的绿线和红线是单个单核苷酸多态性拷贝数估计值。向上的绿线表示大于基线值2的估计,而向下的红线表示小于2的估计。黑色虚线分别表示c-MYC和p-16基因在第8和第9染色体上的相对位置。右侧的面板表示显著性结果。x轴是染色体位置(NCBI Build 33),黑色垂直线代表c-MYC(面板a)和p-16(面板b)基因的位置。y轴是原木10每个给定SNP的转换p值。为了区分删除和放大,日志10当目标值高于参考平均值(放大)和对数时,使用(p值)(向上的绿线10当目标值低于参考平均值(删除)时,使用(p值)(向下的红线)。
图4
图4
连续点分析和单点分析的接收器工作特性(ROC)曲线在每个面板中,假阳性率通过62名正常女性(2名)的漏一交叉验证的平均值来估计。使用1X、3X、4X和5X样本估计真阳性率。范围为第页-可以计算形成ROC曲线的基础的一系列假阳性率和真阳性率。小组(c)和(d)分别扩大了(a)和(b),假阳性率仅扩大到1%,而不是100%。
图5
图5
混合样本的杂合性缺失(LOH)分析x轴是正常DNA样本的混合百分比。y轴是使用三种测量方法得出的剩余LOH信号的比例:LOH单核苷酸多态性(红点和线)、LOH总长度(蓝点和线。LOH区域和长度的定义在方法部分中详细描述。

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引用人

工具书类

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