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.2004年2月;5(2):163-75.
doi:10.1016/s1535-6108(04)00020-0。

人类MUC1癌相关蛋白对基因毒性抗癌药物产生耐药性

附属机构

人MUC1癌相关蛋白赋予对基因毒性抗癌剂的耐药性

健仁等。 癌细胞. 2004年2月.

摘要

MUC1转化蛋白被大多数人类癌症过度表达。目前的研究表明,MUC1 C-末端亚单位(MUC1 C-ter)定位于HCT116/MUC1结肠癌细胞的线粒体,并且异黄素刺激MUC1 C-te的线粒体靶向性。我们还发现,MUC1可减弱顺铂诱导的(1)线粒体凋亡因子的释放,(2)caspase-3的激活,以及(3)凋亡诱导。此外,MUC1siRNA敲低A549肺和ZR-75-1乳腺癌细胞中MUC1的表达与体内外对基因毒性药物的敏感性增加有关。这些发现表明,MUC1减弱了对DNA损伤的凋亡反应,并且这种癌蛋白对基因毒性抗癌药物具有耐药性。

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数字

图1
图1。MUC1 C-ter定位于线粒体
转染HCT116细胞以稳定表达空载体MUC1或MUC1(Y46F)。克隆(A类B类)从两个独立的转染中选择。答:用抗MUC1 N-ter(DF3)、抗MUC1 C-ter(Ab5)和抗β-actin对裂解产物进行免疫印迹分析。B类:细胞与抗MUC1 N-ter(开放模式)或对照小鼠IgG(封闭模式)孵育,并通过流式细胞术分析免疫荧光。抄送:用抗MUC1 N-ter(DF3)或C-ter(Ab5)染色的HCT116/Vector-A、HCT116/MUC1-A和HCT116/MUC1(Y46F)-A细胞的共焦显微镜观察。线粒体用线粒体追踪红染色,细胞核用TO-PRO-3染色。比例尺表示上部三个面板中的20μm,下部面板中的10μm。医生:用抗MUC1 C-ter(Ab5)、Mitotracker Red CMXRos和TO-PRO-3染色的HCT116/MUC1-A细胞的高倍放大。共聚焦图像聚焦于细胞膜(上面板)和线粒体(下面板)的抗MUC1 C-ter染色。比例尺代表10μm。电子邮箱:对HCT116/vector-A、HCT116/MUC1-A和HCT116/MUC1(Y46F)-A细胞的线粒体部分进行SDS-PAGE和免疫印迹,并使用所示抗体。包括全细胞裂解物(WCL)作为检测膜相关MUC1 N-ter、细胞质IκBα、核PCNA和内质网相关钙网蛋白的对照。
图2
图2。HRG刺激靶向线粒体的MUC1 C-ter
答:MUC1 C-ter与所示抗体识别的位点的示意图(上面板)。HCT116/MUC1-A细胞的细胞膜(CM)和线粒体(Mito)组分的裂解物用所示抗体进行SDS-PAGE和免疫印迹分析(下表)。B类:用0、50或100μg/ml胰蛋白酶在4°C下处理纯化的线粒体(0.4 mg蛋白质/ml)20分钟(左)。用所示抗体对样品进行免疫印迹分析。纯化的线粒体(0.4 mg蛋白质/ml)重新悬浮在0.1 M Na中2一氧化碳(pH 11.5),在0°C下培养30分钟,然后在4°C下以100000×μg离心30分钟(右)。上清液(S)和沉淀(P)用指示的抗体通过免疫印迹进行分析。抄送:用GFP标记的MUC1 C-ter(GFP-MUC1 C-te)瞬时转染HCT116细胞,并于36小时后收获。用所示抗体对细胞膜(CM)和线粒体(Mito)部分的裂解物进行免疫印迹分析(左)。将全细胞裂解物(WCL)作为对照。用MitoTracker Red和TO-PRO-3染色后,对转染的HCT116细胞进行共聚焦显微镜检查。比例尺代表10μm。医生:用EGF刺激HCT116/MUC1和HCT116/MUC1(Y46F)细胞30分钟(左)或HRG刺激指定时间(右)。线粒体裂解物用抗MUC1 C-ter和抗HSP60进行免疫印迹分析。信号强度通过密度扫描确定。
图3
图3。MUC1减弱CDDP诱导的固有线粒体凋亡途径的激活
答:用100μM CDDP处理所示细胞8小时和12小时。用抗细胞色素c和抗β-肌动蛋白免疫印迹法分析细胞溶解物。B和C:用100μM CDDP处理所示细胞8小时和24小时。用抗半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3免疫印迹法分析细胞裂解物(B类)或抗PKCδ(C类)和抗β-肌动蛋白。医生:用100μM CDDP处理所示细胞24、48和72小时。用所示抗体进行免疫印迹分析细胞溶胶裂解物。
图4
图4。MUC1减轻DNA损伤和TRAIL诱导的细胞凋亡
答:用100μM CDDP处理所示细胞24小时,然后分析亚G1 DNA。B类:所示细胞的克隆A和克隆B未经处理(开条)或用100μM CDDP处理24小时(实心条)。抄送:所示细胞的克隆A和克隆B未经处理(开条)或用70μM足叶乙甙处理48小时(实心条)。医生:所示细胞的克隆A和克隆B未经处理(开放条)或用20 ng/ml TNF-α和10μg/ml CHX处理12小时(封闭条)。结果显示为通过分析亚G1 DNA确定的凋亡百分比(三个独立实验的平均值±SD)。电子邮箱:所示细胞未经处理(开放栏)或用100 ng/ml TRAIL处理14小时(封闭栏)(左)。如图所示,用100 ng/ml TRAIL和/或10μg/ml CHX处理HCT116/MUC1细胞14小时(右)。结果显示为通过分析亚G1 DNA确定的凋亡百分比(三个实验的平均值±SD)。
图5
图5。MUC1 C-ter定位于不同癌细胞的线粒体
答:将稳定转染以表达空载体或MUC1的SW480癌细胞与抗MUC1 C-ter和FITC-结合二级抗体孵育。线粒体用线粒体追踪红染色,细胞核用TO-PRO-3染色。比例尺代表20μm。B–D:A549肺(B类),T-47D胸围(C类),和ZR-75-1乳腺(D类)通过抗MUC1 C-ter、MitoTracker红和TO-PRO-3染色分析癌细胞。比例尺代表10μm(B类)或20微米(C类D类).
图6
图6。MUC1表达的短暂下调使A549癌细胞对CDDP诱导的凋亡敏感
答:用CsiRNA或MUC1siRNA处理A549细胞,并在转染后72小时收获。用抗MUC1 N-ter和抗β-肌动蛋白免疫印迹法分析裂解产物。B类:A549细胞保持未转染状态(MOCK)或转染MUC1siRNA或CsiRNA,培养72小时,然后用10μM CDDP处理48小时。细胞用FITC-结合膜联蛋白V染色并进行流式细胞术分析。抄送:MOCK(开条)、MUC1siRNA转染(实心条)或CsiRNA转导(阴影条)细胞的结果表示为凋亡百分比(三个独立实验的平均值±SD)。
图7
图7。MUC1的稳定下调使ZR-75-1细胞对CDDP-和足叶乙甙诱导的凋亡敏感
答:用对照逆转录病毒载体或表达MUC1siRNA的载体感染ZR-75-1细胞。在G418存在下选择稳定的转染体。细胞与抗MUC1 N-ter(开放模式)或对照小鼠IgG(封闭模式)孵育,并通过流式细胞仪分析免疫荧光(左)。用所示抗体对裂解液进行免疫印迹分析(右侧面板)。B类:ZR-75-1/载体和ZR-75-1/MUC1siRNA细胞与DiOC孵育6[3] 然后不治疗(对照组)或暴露于25μM CDDP 48小时。通过流式细胞术(上部面板)评估线粒体跨膜电位。用所示抗体(下面板)通过免疫印迹法分析细胞溶解物。C和D:用25μM CDDP处理ZR-75-1/载体(开条)和ZR-75-1-MUC1siRNA(实心条)细胞72小时(C类)或使用10和50μM足叶乙甙72小时(D类). 对细胞进行亚G1 DNA分析。结果显示为凋亡百分比(三个独立实验的平均值±SD)。
图8
图8。MUC1在体内对CDDP治疗产生耐药性
答:HCT116/载体(○, ●) 或HCT116/MUC1(□, ■) 电池(1×106)裸鼠后侧翼皮下注射。B类:ZR-75-1/矢量(○、●)或ZR-75-1/MUC1siRNA(○, ●) 电池(1×107)将其注射到经β-雌二醇预处理的裸鼠体内。按照指示(箭头)对小鼠进行腹腔注射PBS(□, ○) 或7 mg/kg CDDP(■, ●). 根据指定时间的二维测量值计算肿瘤体积。结果表示为每组4-8只小鼠的肿瘤体积(平均值±SD)。

中的注释

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引用人

工具书类

    1. Arnoult D、Gaume B、Karbowski M、Sharpe JC、Cecconi F、Youle RJ。AIF和EndoG的线粒体释放需要Bax/Bak介导的通透性下游的caspase激活。EMBO J.2003;22:4385–4399.-项目管理咨询公司-公共医学
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    1. Datta R、Manome Y、Taneja N、Boise LH、Weichselbaum RR、Thompson CB、Slapak CA、Kufe DW。细胞毒性药物暴露导致Bcl-xL过度表达,从而对电离辐射诱导的核小体间DNA断裂产生抵抗力。细胞生长差异。1995年;6:363–370.-公共医学

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