概述
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产品名称 PerCP/Cy5.5®共轭套件-Lightning-Link® -
产品概述 按照CP/Cy5.5 ® 共轭试剂盒/PerCP/Cy5.5 ® 标签试剂盒ab102911使用一种简单快速的方法对抗体进行PerCP/Cy5.5标记/结合。 它还可以用于偶联其他蛋白质或肽。 了解我们的 抗体标记试剂盒及其优点 .
将抗体与PerCP/Cy5.5结合 ® 使用此套件: -在抗体中添加修饰剂并孵育3小时 -添加淬火剂并孵育30分钟 PerCP/Cy5.5 ® 结合抗体可立即用于WB、ELISA、IHC等。无需进一步纯化,抗体可100%回收使用。
了解以下缓冲区兼容性; 对于不相容的缓冲液和低抗体浓度,请使用我们的快速 抗体纯化和浓缩试剂盒 .使用 常见问题解答 了解更多关于该技术的信息,或关于将其他蛋白质和肽与PerCP/Cy5.5结合的信息 ® .
可根据需要提供高达100 mg的定制尺寸共轭试剂盒。 请联系我们讨论您的要求。 -
笔记 该产品由Abcam公司Expedeon制造,之前称为Lightning-Link ® PerCP/Cy5.5标签套件。 763-0015与1 mg大小相同。 763-0010与3 x 100 ug尺寸相同。 763-0030与3 x 10 ug尺寸相同。 763-0005与100µg粒径相同。 与PerCP/Cy5.5结合的抗体的量和体积 ® 套件尺寸 建议的最大值 抗体量 最大抗体 体积 1 3 x 10微克 3 x 10微克 3 x 10微升 100微克 1 x 100微克 1 x 100微升 3 x 100微克 3 x 100微克 3 x 100微升 1毫克 1 x 1毫克 1 x 1毫升 1 理想的抗体浓度为1mg/ml。如果不超过最大抗体体积,可以使用0.5-1 mg/ml。 抗体>1 mg/ml或<0.5 mg/ml应稀释/浓缩。 共轭缓冲要求 缓冲液的pH值应为6.5-8.5。 兼容的缓冲成分 如果显示浓度,则成分应不超过显示的浓度。 如果几个成分接近可接受浓度的极限,那么这可能会抑制共轭。 50mM/0.6%Tris 1 0.1%牛血清白蛋白 50%甘油 0.1%叠氮化钠 美国公共广播电视公司 磷酸钾 氯化钠 HEPES公司 蔗糖 柠檬酸钠 乙二胺四乙酸 海藻糖 1 Tris缓冲盐水几乎总是≤50 mM/0.6% 不兼容的缓冲成分 硫柳汞 普鲁克林 甘氨酸 精氨酸 谷胱甘肽 DTT公司 如果含有您的抗体或蛋白质的缓冲液成分没有列在上面,请检查 常见问题解答 或 联系我们 . 只有纯化的抗体才适合使用,即在不存在其他蛋白质、肽或氨基酸的情况下:腹水、血清或杂交瘤培养物中的抗体。 储存和处理共轭试剂盒 冻干发光油墨 ® 组件具有吸湿性。 试剂盒特意在室温下与硅胶一起装运,以避免接触湿气。 收到后,将试剂盒冷冻保存并防潮。 在打开外容器之前,让冻干组件达到室温,以尽量减少冷凝。
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图像
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Okagawa、Tomohiro等人使用了PerCP/Cy5.5 ® 共轭套件-照明链路 ® (ab102911),作为研究Boch5D2对牛白血病病毒(BLV)特异性T细胞增殖影响的一部分。 他们使用试剂盒结合PerCP/Cy5.5 ® 抗CD8抗体,克隆CC63,用于流式细胞术。 针对BLV抗原刺激的T细胞增殖。 将经羧荧光素二醋酸盐琥珀酰酯(CFSE)标记的外周血单个核细胞与胎羔肾(FLK)-BLV抗原、对照FLK抗原(A)或gp51肽(0.1和1µg/ml)(B)共培养3次,共培养6天。 用流式细胞术测定CD4+和CD8+γδTCR−T细胞中CFSElow细胞的百分比。 CFSElow细胞代表培养过程中增殖的细胞。 每个点代表三个独立实验的平均值。 通过Dunnett的多个时间点的多重比较测试确定了显著差异。*,#,† 每次刺激P<0.05 vs 0 dpi。 -
Okagawa、Tomohiro等人使用了PerCP/Cy5.5 ® 共轭套件-照明链路 ® (ab102911)作为检测PD-1和LAG-3表达的一部分。 他们用试剂盒偶联了PerCP/Cy5.5 ® 单克隆抗CD3抗体,克隆MM1A,用于流式细胞术。 BLV感染牛CD4+T细胞PD-1和LAG-3的表达。 BLV感染牛(AL和EBL)外周血IgM−CD3+CD4+γδTCR−T细胞PD-1和LAG-3表达分析的门控策略和代表性点图。 象限中的值表示单元格的百分比。 未感染BLV(BLV)的CD3+CD4+T细胞群中PD-1+LAG-3+CD4+T细胞(B)、PD-1+LA G-3−CD4+T细胞(C)和PD-1−LAG-3+CD4+T-细胞(D)的百分比 − ; n个 = 15) ,铝(n = 22),PL(n = 11) 和EBL牛(n = 7). 横线表示组中值百分比。 使用Kruskal–Wallis检验确定各组之间的显著差异,其中P < 0.05和P < 0.001,用星号表示(分别为*和***)。 -
Robinson、Andrew P.等人使用了PerCP/Cy5.5 ® 共轭套件-照明链路 ® (ab102911)作为寡突胶质种群特征的一部分。 他们使用试剂盒结合PerCP/Cy5.5 ® 涉及用于流式细胞术的小鼠单克隆抗NG2抗体。 用PLP139–151免疫SJL/J小鼠,并每天对临床疾病进行评分。 处死一组SJL/J小鼠,并通过流式细胞术分析脊髓(n = 5). (A) 通过正向和侧向散射将细胞与碎片区分开来,然后将单个细胞选通。 活细胞通过死亡细胞排除进行门控,CNS驻留细胞被鉴定为CD45-或CD45low。 (B) 寡突胶质细胞通过双重阳性染色定义为:A2B5+PDGFRα+早期OPCs、A2B5+NG2+中间OPCs,NG2+O4+晚期OPCs和O4+MOG+髓鞘形成前少突胶质细胞,以及GALC+MOG+成熟少突细胞。 -
Nishimori、Asami等人使用了PerCP/Cy5.5 ® 共轭套件-照明链路 ® (ab102911)作为检查牛白血病病毒感染的一部分。 他们使用试剂盒结合PerCP/Cy5.5 ® 抗牛CD8抗体,用于流式细胞术。 将530 mg(1 mg/kg)纯化的4G12静脉接种给一头感染BLV的奶牛(#368,荷斯坦,雌性,538 kg,31个月龄)。 (A) CD4+和CD8+T细胞对BLV抗原的增殖。 从接种4G12的奶牛中分离出的外周血单个核细胞(PBMC)用羧基荧光素二乙酸丁二酰亚胺酯(CFSE)标记,并在无刺激(培养基)或FLK或FLK-BLV细胞上清液培养6天。 培养后立即用流式细胞仪分析T细胞的增殖情况。 P值小于0.05被认为具有统计学意义。#, P<0.05(FLK-BLV,与第0天相比;单因素方差分析,然后进行Dunnett检验)。 (B) 通过4G12与牛PD-L1结合计算循环IgM+B细胞PD-L1占有率的变化。 占有率估计为体内PD-L1结合在总可用结合位点发生的百分比。 (C) 接种4G12的奶牛体内BLV前病毒载量的变化; y轴表示PBMC 50-ng DNA提取物中包含的BLV拷贝数。 数据是至少三个重复实验的平均值±SEM。 -
本图演示了一个通用程序,并将根据所用共轭物略有不同。 -
Maekawa N等人使用ab102911作为检测靶向PD-L1的犬嵌合单克隆抗体的一部分。 他们使用试剂盒结合PerCP/Cy5.5 ® 抗犬CD4抗体用于流式细胞术。 为了评估细胞增殖,在第2天将核苷酸类似物5-乙炔基-2′-脱氧尿苷(EdU)添加到培养基中,并在孵育2天后收集细胞 h.通过前向散射和侧向散射对淋巴细胞群进行门控,并用流式细胞仪测量EdU在(c)CD4+细胞中的掺入。 采用Wilcoxon符号秩和检验进行统计分析。
数据表和文件
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工具书类 (28)
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