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.2021年3月24日;11(12):5650-5674.
doi:10.7150/thno.55482。 eCollection 2021年。

内源性谷氨酸通过ADCY10-依赖性YAP抑制确定肺腺癌对铁下垂的敏感性

附属公司

内源性谷氨酸通过ADCY10-依赖性YAP抑制确定肺腺癌对铁下垂的敏感性

小张等。 治疗诊断科技. .

摘要

理论基础:铁下垂是一种新发现的调节性细胞死亡形式,可在胱氨酸-谷氨酸反转运系统X受到抑制后诱导C类-因为胱氨酸的摄取受损。然而,肺腺癌(LUAD)内源性谷氨酸积累后的结果尚未确定。Yes-associated protein(YAP)由己糖胺生物合成途径(HBP)依赖的O-连接β-N-乙酰葡萄糖胺基化(O-GlcNAcylation)维持,HBP的速率限制酶谷氨酰胺-果糖-6-磷酸转氨酶(GFPT1)可被腺苷酸环化酶(ADCY)磷酸化和抑制-蛋白激酶A(PKA)的介导激活。然而,内源性谷氨酸积累是否通过影响LUAD细胞中的ADCY/PKA/HBP/YAP轴来决定铁下垂敏感性尚不清楚。方法:测量细胞活力、细胞死亡和脂质活性氧(ROS)和丙二醛(MDA)的生成,以评估X系统抑制后对诱导铁下垂的反应C类-采用串联质量标记(TMTs)研究LUAD细胞铁凋亡敏感性的潜在关键因素。免疫印迹(IB)和定量RT-PCR(qPCR)分析蛋白质和mRNA表达。共免疫沉淀(Co-IP)分析用于识别蛋白质相互作用和翻译后修饰。使用适当的试剂盒测量代谢物水平。使用荧光素酶报告分析、染色质免疫沉淀(ChIP)和电泳迁移率变化分析(EMSA)评估转录调控。使用细胞衍生异种移植(CDX)和患者衍生异种移植物(PDX)小鼠模型进行药物给药和限制稀释细胞移植。临床结果、药物疗效和ADCY10表达之间的相关性是根据接受治疗性手术的患者的数据确定的,并使用患者来源的原发性LUAD细胞和组织进行评估。结果:系统X后内源性谷氨酸的积累C类-抑制已被证明通过抑制LUAD细胞中的YAP来确定铁下垂敏感性。GFPT1受损后,LUAD细胞中的YAP O-GlcN酰化和表达无法维持。因此,YAP的河马路径样磷酸化和泛素化增强。ADCY10作为关键下游靶点,并使谷氨酸对PKA依赖性GFPT1抑制的作用多样化。我们还发现,ADCY10的促肿瘤和促铁蛋白降解作用是分别介导的。ADCY10高表达的晚期LUAD对铁凋亡敏感。此外,具有获得性抗药性的LUAD细胞也倾向于ADCY10的高表达,并且更有可能对铁下垂作出反应。最后,由于在后期无法维持YAP刺激的铁蛋白转录补偿,导致了不同程度的次级不稳定铁增加,这进一步解释了为什么LUAD细胞对铁凋亡的敏感性不同。结论:内源性谷氨酸对X系统抑制后的脱铁敏感性至关重要C类-对于晚期和/或耐药肿瘤的LUAD患者来说,以铁下垂为基础的治疗是一个很好的选择。

关键词:铁蛋白;GFPT1;HBP依赖性O-GlcNA酰化;河马通路;NCOA4;XBP1拼接。

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利益冲突声明

竞争利益:作者声明不存在竞争利益。

数字

图1
图1
抑制YAP水平有助于LUAD细胞对铁凋亡的敏感性。(A-B)用含有或不含有Fer-1(1µM)或DFO(80µM。(C)在与A组相同的处理条件下,用相控显微镜监测LUAD细胞12小时的细胞形态。(D)使用或不使用橡皮素(10µM)处理12 h后LUAD细胞的典型TEM图像。比例尺,500 nm。(E-F)通过测量C11BODIPY染色、流式细胞术(E)和MDA检测试剂盒(F)检测LUAD细胞在与A组相同的治疗条件下16 h的脂质ROS和MDA生成。(G)在用或不用橡皮素(10µM)处理24小时后,在LUAD细胞中测量相对不稳定铁。(h-I)热图显示了用橡皮酶(10μM)处理24h后H1975细胞中排名前五位的上调和下调蛋白质(TMT测量)。火山图也用于显示改变的蛋白质(I)。(J)用二甲基亚砜或橡皮素(10µM)处理LUAD细胞24小时后的YAP IB。YAP的水平归一化为GAPDH的水平,DMSO处理A549细胞中YAP的归一化水平任意设置为1。(K)在橡皮素(10µM)处理24 h后,诱导细胞死亡与残留YAP水平之间的相关性。诱导细胞死亡和残留YAP浓度计算为DMSO处理的倍数或百分比。(长-米)细胞死亡(L)和MDA(M)在重量,βTrCP-/-蓝色1-/-用含有或不含Fer-1(1μM)或DFO(80μM)的橡皮素(10μM)处理24小时后的H1975细胞。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD**P<0.01表示有统计学意义。使用双向方差分析测试分析A、B、E、F、G、J、L、M的数据。H和I的数据采用Student t检验进行分析。使用Spearman秩相关分析对K中的数据进行分析。
图2
图2
内源性谷氨酸的积累通过降低YAP O-GlcNAcylization来决定铁下垂敏感性。(A)谷氨酸吸收和代谢示意图。(B)GGG细胞结构示意图。(C)在有或无EGCG(5µM)的情况下,使用或不使用Dox(1µg/ml)处理24小时后,在GGG细胞中测量细胞内谷氨酸。(D-E)内源性谷氨酸有助于铁下垂敏感性。GGG细胞在用含有或不含Fer-1(1µM)或DFO(80µM。通过SYTOX绿色染色,然后通过流式细胞术测量处理24小时后的细胞死亡(D)。治疗16 h(E)后测量相对MDA。(F)内源性谷氨酸调节YAP的磷酸化和O-GlcNA酰化。用IB在H1975-based GGG细胞中测量S127处YAP的磷酸化、T241处YAP O-GlcNAcylation和总YAP,处理方式与面板D相同,但用橡皮素处理8h。蛋白质水平归一化为GAPDH的水平,DMSO处理细胞中蛋白质的归一化水平任意设置为1。(G)Thr241是YAP的主要O-GlcNA酰化位点,由内源性谷氨酸调节。将外源性YAP-FLAG(WT或T241A)转染到H1975-based GGG细胞中,然后以与面板D相同的方式处理,但用橡皮素处理8小时。使用抗FLAG抗体进行YAP-FLAG的免疫沉淀,并使用抗O-GlcNAc抗体通过IB测量YAP-O-GlcNA酰化。将蛋白质的水平标准化为FLAG的水平,并且将DMSO处理的细胞中的蛋白质的标准化水平任意设置为1。(H-J)内源性谷氨酸对YAP的修饰和调节至关重要。相对O-YAPT241型(H) 、总YAP水平(I)和p-YAP第127节(J) 用IB测量,并计算用橡皮素(10µM)和二甲基亚砜处理的GGG细胞与面板F中处理方法相同的细胞之间的差异。(K-L)YAP的Thr241 O-GlcNA酰化对铁凋亡敏感性至关重要。测定小鼠血清YAP水平(K)、细胞死亡、脂质ROS和MDA生成量(L)YAP公司-/-YAP重组H1975细胞重量或YAPT241A型在用含有或不含有Fer-1(1µM)或DFO(80µM。分别于治疗8h、24h和16h后测定YAP水平、细胞死亡、脂质ROS和MDA生成。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD**P<0.01表示有统计学意义。使用双向方差分析测试分析C、D、E、H、I、J的数据。L中的数据采用单向方差分析测试进行分析。
图3
图3
GFPT1对内源性谷氨酸对测定铁下垂敏感性至关重要。(A)从葡萄糖到O-GlcNA酰化的HBP信号的示意图概述。(B)内源性谷氨酸影响HBP代谢物。在与图2D相同的处理下,在基于H1975的GGG细胞中测量指示代谢物。(C)在与图2D相同的处理条件下,测量GGG细胞中的相对GFPT1活性,但用或不用橡皮素(10µM)处理8小时。用橡皮素和DMSO处理的细胞之间的GFPT1活动标准化。(D)GFPT1下游的代谢物通过橡皮素恢复YAP的改变。p-YAP(对-YAP)第127节、O-YAP第241页用IB测定用或不用橡皮素(10µM)、葡萄糖(25 mM)、GlcN(5 mM)或GlcNAc(5 mM)处理8 h的H1975细胞的YAP。(E-F)GlcN和GlcNAc降低了铁下垂敏感性。在存在或不存在GlcN(5mM)或GlcNAc(5mM)的情况下,用erastin(10µM)处理LUAD细胞,加入或不加入Fer-1(1µM)或DFO(80µM)。在治疗24小时(E)后测量细胞死亡。在处理16小时后测量MDA(F)。(G)GFPT1型S205A型通过擦除恢复YAP更改。GFPT1标记S205A型在使用或不使用橡皮素(10µM)处理8 h之前,在H1975细胞中体外表达。用IB分析指示蛋白。(H)GFPT1增强YAP的蛋白质稳定性。在有或无GFPT1过度表达或敲除的H1975细胞中进行CHX(10µg/ml)追踪实验。YAP的相对蛋白水平显示为YAP和GAPDH的比值,“0 h”点任意设置为100%。(一)GFPT1减少YAP的泛素化。在使用抗YAP抗体进行免疫沉淀后,使用抗Ub抗体在GFPT1过度表达或敲除的对照细胞和H1975细胞中测量YAP的泛素化。IgG抗体用作阴性对照。(J-K)GFPT1的恢复降低了细胞凋亡的敏感性。GFPT1标记S205A型在用含有或不含有Fer-1(1µM)或DFO(80µM。用SYTOX绿染色和流式细胞术(J)检测治疗24 h后细胞死亡情况。治疗16h(K)后测定MDA。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD**P<0.01表示有统计学意义。B组数据采用单因素方差分析进行分析。使用双向方差分析测试分析C、E、F、J、K的数据。
图4
图4
LUAD细胞中无效的XBP1剪接促进了谷氨酸对GFPT1的抑制。(A)用二甲基亚砜或橡皮素(10µM)处理LUAD细胞8小时后,GFPT1的IB值。GFPT1水平归一化为GAPDH水平,DMSO处理A549细胞中GFPT1归一化水平任意设置为1。(B)橡皮素对GFPT1活性的降低与GFPT1的表达密切相关,计算为与DMSO处理8h的GFPT1表达的百分比。(C)使用IB和GDH分析方法分析GFPT1的表达和活性重量GFPT1型-/-A549和H1975细胞。(D)拼接或未拼接形式的XBP1型通过琼脂糖凝胶电泳通过半RT-qPCR测量的LUAD样本中的mRNA。(E)显示的LUAD样本百分比XBP1型拼接条件。(F)无效的XBP1剪接有助于GFPT1降低。将具有或不具有异位表达XBP1的基于H1975的GGG细胞置于与图2D中相同的处理下,但用或不用erastin(10µM)处理8小时。将MDA-MB-231细胞作为平行对照处理。利用GDH分析法分析GFPT1的相对活性。使用正常凝胶或含有phostag™的凝胶,通过IB分析细胞核和胞质部分中的总GFPT1和磷酸化GFPT1。(G)在用橡皮素(10µM)处理8小时之前,在MDA-MB-231细胞中敲除XBP1。将H1975细胞作为平行对照。GFPT1活性、总GFPT1和磷酸化GFPT1的分析方法与图4F相同。(H)GFPT1在S205被erastin和Sorafenib磷酸化。使用含有phostag™的凝胶在H1975细胞中使用或不使用橡皮素(10μM)、索拉非尼(5μM)和RSL3(5µM)处理8小时后,通过IB分析所示GFPT1-FLAG的磷酸化。(一)S205处的磷酸化对GFPT1降解至关重要。在使用或不使用Dox和EGCG预处理24小时后,再使用橡皮素(10µM)进一步处理指定小时,用IB在H1975-based GGG细胞中测量所示GFPT1-FLAG的降解。GFPT1水平归一化为GAPDH水平。数据显示为三个生物重复(包括IB和半RT-qPCR)的平均值±SD**P<0.01表示有统计学意义。C、F、G组数据采用单因素方差分析。我的数据采用双向方差分析测试进行分析。B组数据采用Spearman秩相关分析进行分析。
图5
图5
ADCY10 PKA依赖性决定LUAD细胞的铁凋亡敏感性。(A)内源性谷氨酸通过PKA磷酸化GFPT1。基于H1975的GGG细胞在进一步使用或不使用橡皮素(10µM)之前,在存在或不存在H89(10μM)和Rp-cAMPs(200μM)的情况下,接受与图2C中相同的处理8小时。通过IB分析指示蛋白。(B)在与A组相同的处理下,用GDH法分析H1975基GGG细胞中GFPT1的活性。(C-F)PKA促进橡皮素诱导的铁下垂。用橡皮素(10µM)处理体外表达PKACα的A549和H1975细胞,在存在或不存在PKI(10μM)、Fer-1(1μM)或DFO(80μM)的情况下。在治疗24 h后分析细胞活力(C)和细胞死亡(D),并在治疗16 h后分析脂质ROS(E)和MDA生成(F)。(G)对90对LUAD及其邻近标本进行ADCY10水平分析。(H) 重量ADCY10年-/-基于H1975的GGG细胞受到与图2D相同的处理,但使用或不使用橡皮素(10µM)处理8 h。使用GDH方法分析相对GFPT1活性,并使用IB分析ADCY10。蛋白质水平归一化为GAPDH的水平,DMSO处理细胞中蛋白质的标准化水平被任意设置为1。(I-K)在用橡皮素(10µM)进一步处理8 h之前,用或不用EGTA(0.1 mM)、Dox(1µg/ml)和EGCG(5µM2+(一) 然后测量cAMP浓度(J)和GFPT1活性(K)。(长-米)ADCY10的表达与erastin(10µM)处理8 h后GFPT1活性降低和诱导cAMP相关。GFPT1活力降低(L)和诱导cAMP(M)显示为DMSO处理对照的百分比,ADCY10通过IB在指示的LUAD细胞中测量。(N)不同ADCY10水平的LUAD组织切片的代表性显微照片,用erastin(10µM)加或不加Fer-1(1µM)处理24小时。通过IHC测量ADCY10水平。用PI(红色)和DAPI(蓝色)观察铁中毒细胞和细胞核。每个样本的PI阳性面积也计算为占整个截面的百分比,并在右侧绘制。比例尺,1 mm。(O)在与面板N中相同的样品中测量MDA浓度(N=20/组)。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD**P<0.01表示有统计学意义。采用单因素方差分析对B、C、D、E、F、H、I、J、K、N、O的数据进行分析。G中的数据采用Student t检验进行分析。L、M的数据采用Spearman秩相关分析进行分析。
图6
图6
ADCY10表达较高的LUAD更容易发生铁凋亡。(A)接种指定天数后,监测H1975细胞形成的异种移植物体积,包括是否敲除ADCY10。从接种后第18天开始,每天给药一次DMSO或IKE(50 mg/kg),共14天。(n=5/组)。(B)接种后监测携带H1975细胞形成的异种移植物的小鼠存活情况,无论是否敲除ADCY10,每天给药一次DMSO或IKE(50 mg/kg),持续14天,从接种后第18天开始。(n=8/组)。(C)治疗性手术后ADCY10高表达(n=53)或低表达(n=33)的LUAD患者的生存率。(D)在第一、二和三期LUADs中测量ADCY10水平(n=20/组)。(E)在用增加浓度的橡皮素处理指定小时后,通过测量原代LUAD细胞中的细胞ATP来测定细胞活力。(F)在与E组相同的处理下,测量BEAS-2B或MRC-5细胞的细胞活力。(G)用IKE(50 mg/kg)加或不加Lipro-1(10 mg/kg)治疗后指定时间的PDX体积,每天一次,持续14天(n=8/组)。(H)用IKE(50 mg/kg)加或不加Lipro-1(10 mg/kg)治疗PDX荷瘤小鼠14天,每天一次后的存活率(n=8/组)。(一)小鼠胸膜内注射PLUADC-I/III细胞36天后肺切片的典型显微照片。蛋白质按指示染色。虚线分隔了原发肿瘤和正常肺。DAPI(蓝色)显示细胞核。图中间的箭头指向继发肿瘤。右图中的箭头指向ADCY10和CD31共同表达的促血管性肿瘤(n=8/组)。比例尺,500µm。(J-K)hVIM数量的量化+继发性肿瘤(J)与ADCY10+/CD31型+全肺检测到血管性肿瘤(K),与第一组相同(n=8/组)。(左)在IKE(50 mg/kg)加或不加Lipro-1(10 mg/kg)再给药14天之前,将PLUADC-III细胞注射24天的小鼠肺切片的代表性显微照片。(n=8/组)。比例尺,500µm。(M-N)形成hVIM的PLUADC-III数量的量化+继发性肿瘤(M)和ADCY10+/CD31型+促血管性肿瘤(N)接受与L组相同的治疗(N=8/组)。(O-P)在A549顺铂耐药(C雷斯)以及用或不用顺铂(10µM)、erastin(10µM)或Sorfenib(5µM)处理指定小时的亲代细胞。(问)通过IHC检测同一患者对伊可替尼耐药前后LUAD组织中ADCY10的表达。(R-S)在父母和AZD9291耐药(A雷斯)H1975和HCC827细胞用或不用AZD9291(10µM)、橡皮素(10μM)或索非尼(5µM。(T)ADCY10促进EMT。用IB法检测ADCY10敲除前后H1975和HCC827细胞的EMT指标。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD*P<0.05,**P<0.01表示有统计学意义。采用单因素方差分析对D、J、K、M、N的数据进行分析。使用双向方差分析测试分析A、E、F、G、P、S的数据。B、C、H的数据采用对数秩分析进行分析。
图7
图7
YAP的还原通过FTH1升高铁来敏化铁下垂。(A)相对活性铁的测量单位为重量βTrCP-/-使用或不使用橡皮素(10µM)处理24小时后的H1975细胞。(B)在与图2D相同的处理下,在GGG细胞中测量相对不稳定铁。用橡皮素和二甲基亚砜处理的人之间的活性铁被归一化。(C)p-YAP(对-YAP)第127节、O-YAPT241型用IB在用橡皮素(10µM)处理的H1975细胞中测量指定小时的总YAP。(D-F)用橡皮素(10µM)处理LUAD细胞数小时后,测量相对不稳定铁(D)、脂质ROS生成(E)和细胞死亡(F)。在擦除后处理10 h时添加DMSO或DFO(A549,2µM;H358,15µM,H1299,5µM。(G)在橡皮素(10µM)处理24小时后,诱导的细胞死亡和剩余FTH1水平之间的相关性。诱导的细胞死亡率和剩余FTH2水平计算为DMSO处理的倍数或百分比。(H)FTH1于年被击倒βTrCP-/-用含有或不含Fer-1(1µM)的橡皮素(10μM)处理H1975细胞24小时。使用SYTOX绿色染色法和流式细胞术测量细胞死亡。(I-J)在用橡皮素(10µM)进一步处理指定小时之前,用或不用Dox(1µg/ml)和EGCG(5µM)预处理24小时的H1975-based GGG细胞中的FTH1蛋白(I)和mRNA(J)。蛋白质水平被归一化为GAPDH的水平,经橡皮素处理的0 h细胞中蛋白质的归一化水平被任意设置为1(I)。(K)铁蛋白噬菌体增强YAP与英尺1英寸发起人。用橡皮素(10µM)处理有或没有NCOA4敲除的H1975细胞4小时英尺1英寸用ChIP-qPCR检测启动子。(长-米)动态YAP和TFCP2绑定到FTH1(飞行时间1)由橡皮素触发的启动子。重量βTrCP-/-以H1975为基础的GGG细胞受到与第一组相同的处理FTH1(飞行时间1)在指定时间用ChIP-qPCR检测启动子。数据显示为三个生物复制品(包括IB)的平均值±SD*P<0.05,**P<0.01表示有统计学意义。A、H、K的数据通过单因素方差分析进行分析。使用双向方差分析测试分析B、J、L、M的数据。G组数据采用Spearman秩相关分析进行分析。
图8
图8
研究模型。在基础条件下,GFPT1维持YAP的O-GlcNA酰化,以防止YAP受到河马路径依赖性抑制,如βTrCP介导的泛素化。同时,FTH1的基础转录由TFCP2控制,以调节铁稳态。当系统XC类-被抑制,内源性谷氨酸积累,从而促进钙2+-ADCY10产生依赖性cAMP以刺激PKA相关的磷酸化和GFPT1的抑制。随后,YAP不可避免地受到抑制,并且在后期无法维持铁蛋白噬菌体触发的FTH1转录代偿。这也导致LUAD细胞中不稳定铁升高和铁下垂敏感性不同。

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