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比较研究
.2006年1月;15(1):182-9.
doi:10.1110/ps.051812706。 Epub 2005年12月1日。

SUMO融合技术与传统基因融合系统的比较:SUMO增强表达和溶解度

附属公司
比较研究

SUMO融合技术与传统基因融合系统的比较:SUMO增强了表达和溶解性

杰弗里·G·大理石等。 蛋白质科学. 2006年1月.

摘要

尽管有许多基因融合系统可用,但重组蛋白在大肠杆菌中的表达仍然很困难。为难以表达的蛋白质建立最佳融合伙伴仍然是经验性的。为了确定哪种融合标签最适合难表达蛋白,对新描述的SUMO融合系统与各种常用的融合系统进行了比较分析。在本研究中,三种模型蛋白,增强型绿色荧光蛋白(eGFP)、基质金属蛋白酶13(MMP13)和肌肉生长抑制素(生长分化因子-8,GDF8),与麦芽糖结合蛋白(MBP)、谷胱甘肽S-转移酶(GST)、硫氧还蛋白(TRX)、NUS A、泛素(Ub)和SUMO标签的C末端融合。这些构建物在大肠杆菌中表达,并评估其表达和溶解度。正如预期的那样,融合标签产生易处理数量的可溶性eGFP、MMP13和GDF8的能力各不相同。SUMO和NUS A融合显著提高了重组蛋白的表达和溶解性。然后确定SUMO和NUS A融合标签从其伴侣蛋白中移除的难易程度。SUMO融合物被天然SUMO蛋白酶切割,而AcTEV蛋白酶位点必须在NUS A及其伙伴蛋白之间进行工程。动力学分析表明,SUMO和AcTEV蛋白酶具有相似的KM值,但SUMO蛋白酶的kcat比AcTEV酶高25倍,表明这是一种催化效率更高的酶。综上所述,这些结果表明,SUMO在增强表达和溶解度方面优于常用的融合标签,与生成具有天然序列的重组蛋白不同。

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图1。
图1。
他的表达6-GFP以及与Ub、SUMO、MBP、GST、TRX和NUS A蛋白的融合。大肠杆菌从LB增长到OD600=0.6,37°C,用1 mM IPTG诱导,20°C孵育过夜。通过SDS-PAGE解析蛋白质组分,并用考马斯染色。箭头表示各蛋白带的预期/观察位置。(联合国)非工业化文化;(IN)诱导培养;(S) 可溶性细胞裂解物;(IB)包涵体。
图2。
图2。
他的表达6-MMP13(氨基酸20-274)和与Ub、SUMO、MBP、GST、TRX和NUS A蛋白的融合。大肠杆菌从LB增长到OD600=0.6,37°C,用1 mM IPTG诱导,20°C孵育过夜。蛋白质组分通过SDS-PAGE进行解析,并用考马斯染色。箭头表示各蛋白带的预期/观察位置。(联合国)非工业化文化;(IN)诱导培养;(S) 可溶性细胞裂解物;(IB)包涵体。
图3。
图3。
他的表达6-GDF8和与Ub、SUMO、MBP、GST、TRX和NUS A蛋白的融合。大肠杆菌在LB中生长到OD600=0.6,37°C,用1 mM IPTG诱导,20°C孵育过夜。蛋白质组分通过SDS-PAGE进行解析,并用考马斯染色。箭头表示各蛋白带的预期/观察位置。(联合国)非工业化文化;(IN)诱导培养;(S) 可溶性细胞裂解物;(IB)包涵体。
图4。
图4。
()SUMO和AcTEV蛋白酶裂解SUMO-eGFP和NUSAeGFP的动力学数据。数据表示三个独立实验的平均值,误差条表示范围。使用非线性回归(R2如各图所示),并用于计算KM(M)和k(表2)。(B类)SDS凝胶描述了使用SUMO融合标签纯化GFP。可溶性细胞裂解物通过Ni-NTA柱,用20 mM咪唑洗涤,并用300 mM咪唑啉洗脱(亲和纯化)。在标准条件下用SUMO蛋白酶进行裂解,样品通过另一个Ni-NTA柱,去除SUMO酶和标签(减去)。在15%SDS-聚丙烯酰胺凝胶中分析SUMOGFP典型纯化的这些不同步骤。使用库马西蓝染色观察蛋白质。箭头表示各蛋白带的预期/观察位置。

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