研究对象
这是一个回顾性分析。本研究包括2012年3月至2014年5月接受子宫切除术的I型EC患者。MR成像和手术之间的时间间隔为1-10天(中位数为4天)。这些患者接受了全子宫切除术、双侧输卵管卵巢切除术和盆腔淋巴结清扫术。国际妇产科学联合会(FIGO)分期、局部浸润(子宫肌层浸润、宫颈浸润和淋巴结转移)、分级和大小(最大直径)由经验丰富的病理学家确定。根据2014年FIGO修订的分期标准确定肿瘤分期[8].
纳入标准如下:1)经手术病理证实的I型EC患者(雌激素受体阳性);2) 接受MRS的患者;和3)具有完整信息的患者,包括肿瘤FIGO分期、分级、大小和Ki-67 SI。排除标准:排除病变中没有令人满意的MRS体素的受试者。山东第一医科大学附属山东省医院伦理审查委员会放弃了知情同意,因为这是一项回顾性分析。所有方法均按照赫尔辛基宣言进行,研究获得山东第一医科大学附属山东省医院伦理审查委员会的批准(批准号:SWYX2020-051)。
MR成像
MR检查采用3.0-T系统(Magnetom Verio,Siemens,Germany)进行,该系统配备八通道骨盆相控阵表面线圈和集成脊柱线圈。在MR成像之前,患者禁食4小时。在图像采集之前,注射盐酸瑞香异达明注射液(中国杭州民生制药有限公司),以减少肠蠕动。膀胱部分填满。
MR成像除常规序列外,还包括3D多体素1H MRS,即T2加权(T2W)成像、弥散加权(DWI)成像和动态对比增强(DCE)成像。常规MR成像参数如表所示1.MRS(参数为TR,750 ms;TE,145 ms;翻转角,90°;矢量大小,512;带宽,1250 Hz)采用基于点解析光谱序列的3D化学位移成像技术进行。使用加权椭圆K-Space采集模式来节省扫描时间,并对K-Space数据应用宽度为100%(相对于K-Space维度)的Hamming滤波器,以抑制由于点扩散函数导致的相邻体素污染。对于胆碱的获取,脂肪和水被MEGA脉冲同时抑制[9]而对于水信号采集,仅使用脂肪抑制的MEGA脉冲。除平均采集次数外,未抑制水和抑制水的MRS具有相同的成像参数,采集次数为6次(水抑制光谱)和2次(未抑制水光谱)。8条饱和带位于子宫和病变周围,以抑制宫外脂质或膀胱的信号污染(图1). 视野(FOV)为84 mm×84 mm。基质为12×12。体素大小为7 mm×7 mm×7mm。MRS数据覆盖在相应的轴位、矢状位和冠状位T2W图像上。获取MRS数据大约需要16分钟。解剖图像,包括轴向、矢状和冠状T2W图像以及DCE图像,被用作参考图像,以选择病变实体部分的感兴趣体素,避免囊性或坏死区域。因此,尽管FOV覆盖了病灶,但在肿瘤的实体部分选择了有效的体素。
MRS数据分析
使用jMRUI v.5.2软件执行MRS处理(http://sermn02.uab.es/mrui). 对Cho和水峰值进行了量化。在抑制水的光谱中,在3.2 ppm处检测到Cho峰。在未抑制水的光谱中,检测到的水峰值为4.7 ppm。在Cho峰量化之前,需要对光谱进行预处理,如下所示:用“洛伦兹”5 Hz滤波,进一步水抑制和傅里叶变换。如果Cho峰值存在相位偏移,则执行相位校正。对水峰进行相同的预处理,除了进一步的水抑制。采用时域拟合算法AMARES(精确、稳健和高效谱拟合的高级方法)量化水峰和Cho峰。代谢物的振幅标准偏差(即Cramér-Rao标准偏差[CRSD])可通过AMARES拟合算法获得。CRSD可以用来测量代谢物峰拟合的准确性,它反映了信噪比(SNR)。代谢物的相对CRSD由CRSD/振幅计算,与信噪比呈负相关。根据Cho峰和水峰的正确位置、相对稳定的基线以及没有大的脂质信号,光谱的可用性由放射科医生和分光镜医生一致决定(均不考虑患者的临床信息)。排除相对代谢物CRSD大于20%或半峰全宽(FWHM)大于15 Hz的任何光谱。共包括2364个I型EC体素(中位数,32;范围,每名患者1–273)。放射科医生还解释了常规MR图像。
Cho/水是这里的统计单位(等式1). 在等式中1,赵我是我第个抑制水的体素;水我是我第个无抑制水的体素;n个是患者包含的体素总数。Cho/水反映了组织中的Cho浓度。
$${text{Cho/water}}=(\sum\limits_{i=1}^{n}{{text{Cho}}_{i}/{text{water}{{i}})/n$$
(1)
DWI数据分析
ADC图由DW图像自动生成(b=0、100、400和800 s/mm2). 两名放射科医生根据病变形态,避开囊性和坏死区,分别将感兴趣区域(ROI)放置在肿瘤的ADC图上,并以DW图像、T2W图像和DCE图像作为参考图像(图2).
通过平均所有ROI中所有体素的ADC值来计算肿瘤的平均ADC值(等式2). 由于ROI的区域差异很大S公司我是的重量模数转换器我.公式2可以准确地提供平均ADC。两名放射学家测量的平均ADC被定义为最终平均ADC(ADC米).
$${\text{平均ADC}}=(\sum\limits_{i=1}^{n}ADC_{i}*S_{i})/\sum\limits_{i=1}^{n} S公司_{我}$$
(2)
Ki-67的免疫组织化学分析
免疫组化染色采用Ki-67小鼠单克隆抗体(MIB-1;ZSGBBIO,中国北京)。简单地说,石蜡切片。(4μm)置于烘箱(60°C)中过夜。切片在二甲苯中脱蜡(三个圆柱体,每个10分钟),与分级醇一起孵育,然后在蒸馏水中洗涤3次(每次2分钟)。用柠檬酸抗原修复液修复切片,然后浸泡在0.3%H中2O(运行)2室温下在甲醇中放置15分钟。然后,用磷酸盐缓冲盐水冲洗载玻片三次(每次3分钟)。为了提取抗原,将载玻片在0.01 M柠檬酸盐缓冲液(pH 6)中的高压釜中加热。然后,将载玻片冷却至室温并用PBS冲洗。非特异性蛋白封闭后,将载片与一级抗体在37°C下孵育90分钟。然后,将载玻片与相应的二级抗体孵育20分钟。然后用苏木精对载玻片进行复染。
当细胞核染成棕色时,Ki-67被视为阳性。Ki-67 SI被定义为根据目镜网格计数的1000个细胞中阳性细胞核的百分比,该目镜网格由病理学家以盲法进行。
统计分析
使用SPSS for Windows 17.0版(SPSS,伊利诺伊州芝加哥)进行统计分析。P(P) < 0.05被认为具有统计学意义。采用Kolmogorov–smirnov检验检测数据是否呈正态分布。对I型EC的Cho/水进行二分分析,得出Ki-67 SI≤40%与>40%[2]. Ki-67高表达肿瘤(>40%)的五年癌症特异性生存率为58%,而Ki-67低表达肿瘤的五年肿瘤特异性存活率为88%[2]. 可靠性分析用于测试两名放射科医生之间平均ADC的一致性。Cho/water和ADC的比较米,在不同的FIGO阶段或不同等级的EC之间使用单因素方差分析(ANOVA)进行。Cho/水和ADC米采用独立样本t检验比较Ki-67 SI表达水平不同、肌层深部和浅部侵犯、有无颈部侵犯以及有无淋巴结转移的I型EC。接收器工作特性(ROC)曲线分析用于确定最佳Cho/水阈值,以区分这两组。Pearson相关检验用于分析Cho/water和Ki-67 SI之间的相关性、Cho/Woter和肿瘤大小之间的相关性,以及Ki-67 S1和肿瘤大小以及ADC之间的相关性米和Ki-67 SI,以及ADC之间米和肿瘤大小。进行Spearman相关检验,分析Cho/water与包含体素数、Ki-67和FIGO分期、Ki-67-与肿瘤分级、Cho/water与FIGO分级、Cho/water与肿瘤分级以及ADC之间的相关性米和FIGO级,以及ADC之间米肿瘤分级。