目的:我们之前已经表明,在唾液中发现了转录组,这些信使核糖核酸的亚组可以用作口腔癌的生物标志物。在这项研究中,我们测量了唾液中microRNA(miRNA)的存在,并确定了其作为口腔癌生物标记物的潜力。
实验设计:使用逆转录酶扩增定量PCR对12名健康对照者共314个miRNAs进行了检测。在室温下测量内源性和外源性唾液miRNAs随时间的降解模式。在50名口腔鳞状细胞癌患者和50名健康对照组受试者的唾液中验证了选定的miRNA。
结果:我们在整个唾液和上清液中检测到约50个miRNAs。内源性唾液miRNA的降解速度比外源性miRNA慢得多。两种miRNA,miR-125a和miR-200a的水平明显较低(P(P)口腔鳞状细胞癌患者唾液中的含量低于对照组。
结论:健康对照组的全唾液和上清液中都含有数十个miRNAs,与唾液中的mRNAs类似,这些miRNA是稳定的。唾液miRNAs可用于口腔癌检测。(《临床癌症研究》2009;15(17):5473–7)
口腔鳞状细胞癌(OSCC)占口腔癌的约90%。在美国,口腔鳞癌是第六大常见癌症,每年导致约8000人死亡(1). OSCC的平均5年生存率为~50%。令人震惊的是,这个数字在过去三十年里没有变化(2). 因此,需要一种早期检测OSCC的方法来提高患者的长期生存率。
唾液被用作口腔鳞状细胞癌的诊断介质,唾液分析物如蛋白质和DNA被用于检测口腔鳞状上皮细胞癌(1, 3, 4). 我们的实验室最近显示,唾液中存在数千个mRNA,一组唾液mRNA可用于口腔癌检测(5–7). 唾液mRNA似乎通过各种来源进入口腔,包括三个主要的唾液腺、龈沟液和脱落的口腔上皮细胞(8). 大多数唾液mRNA似乎以部分降解形式存在(9). 这些部分降解的mRNA通过与未知大分子的结合维持其在唾液中的稳定性(8).
微小RNA(miRNA)线-4和let-7最初发现于秀丽线虫作为动物发育的关键调节器(10). 自2000年以来,miRNA被大量挖掘(11–13). 从那时起,miRNA的产生机制和作用方式就得到了很好的描述。miRNAs作为mRNA内含子的一部分或作为一个独立的基因单位由RNA聚合酶II或RNA聚合物III转录(14, 15). 最初转录的miRNAs可以有数百到数千个核苷酸长,并且具有独特的干环结构,它被一种名为Drosha的III型RNase切割成<100个核苷酸干环结构(16). 然后,这些前miRNAs通过exportin 5从细胞核输出到细胞质。在细胞质中,前miRNA通过另一种III型核糖核酸酶Dicer进行另一轮核内裂解(17, 18). 完全处理的miRNAs长度约为18至24个核苷酸。这些成熟的miRNAs由一种称为RNA-induced silencing complex(RISC)的蛋白质复合物结合,该复合物由四种精氨酸家族蛋白Ago1-4组成(19). 这种活性miRNA-RISC复合物基于miRNA和mRNA之间的序列同源性与靶mRNA结合。通常,miRNA阻碍mRNA翻译和/或导致mRNA降解。由于miRNAs与靶mRNAs的互补性稍有缺陷,估计一个miRNA能够以不同的结合效率结合100多个不同的mRNA。由于人类基因组中预计存在约1000个miRNAs,推测所有mRNAs中约30%是由miRNAss转录后调节的(20, 21).
最近从各种生物体中发现了数百种miRNA,并进行了功能分析,结果表明miRNA在细胞生长、分化、凋亡、应激反应、免疫反应和葡萄糖分泌方面具有重要功能(22–26). 许多研究小组已经表明,与正常细胞相比,miRNAs在各种癌症细胞中的表达是不同的,并且似乎miRNA比mRNA更准确地聚集不同类型的实体肿瘤,这表明miRNA可以用于检测癌症(22). 此外,癌细胞和正常细胞之间mRNA的倍数变化相对较小,而许多miRNAs的表达水平表现出数十到数百倍的倍数变化(27).
在这项工作中,我们在健康对照组和口腔鳞癌患者的全唾液和上清液中分析了最近发布的miRBase 12.0版中注册的708个人类miRNAs中的314个。