人上皮细胞的分离
将乳房缩小成形术所得的乳房组织手动切割成小块(约0.5 cm立方),并在37°C的摇晃培养箱中用0.5–1 mg/ml胶原酶(I型;英国普尔Sigma)在无酚DMEM(英国吉伯科佩斯利)中消化过夜,并补充5%炭化处理血清。酶消化后,倾析脂肪层,并用DMEM培养基多次清洗上皮颗粒。如哈洛斯所述,通过从140和53μm孔径的聚酯单丝网(英国沃林顿Locker Tex)连续过滤和反冲洗,从红细胞、成纤维细胞和内皮细胞中分离出乳腺类器官(导管和小叶泡结构)等. [7]. 通过在0.25%胰蛋白酶-EDTA(Sigma)中移液,然后通过40μm筛孔(Becton Dickinson,San Jose,CA,USA)过滤,以产生主要为单细胞悬浮液,对汇集的类有机物进行分解。
小鼠乳腺上皮细胞的分离
基本上如Smalley所述收获原代小鼠乳腺上皮细胞等. [8],修改由Naylor描述等. [9]. 简言之,从8周龄至10周龄处女FVB小鼠中取出第四块乳腺脂肪垫,并进行机械和酶消化,以获得上皮“类有机物”。通过差异电镀去除污染的成纤维细胞,并将有机物酶消化成单细胞。然后直接处理原代细胞进行Hoechst染色,无需干预培养。
小鼠骨髓细胞的分离
解剖FVB小鼠的股骨。用解剖剪刀剪断每块骨头的末端,用一个装有PBS的5毫升注射器和一根25 G的针(比利时鲁汶特鲁莫)从骨头两端冲洗骨髓。用L15/10%FCS清洗稀释后的骨髓并制成颗粒。通过将颗粒重新悬浮在1 ml红细胞裂解缓冲液(Sigma)中,快速上下移液,并在37°C下孵育5分钟,对红细胞进行裂解。如果洗涤后仍存在红细胞(颗粒中呈红色),则再次重复裂解程序。
小鼠乳腺上皮细胞的克隆培养
为了分析形态学和克隆效率,将小鼠乳腺上皮细胞以每瓶2000个细胞的速度在25 cm内培养2含有5×10的组织培养瓶5辐照(20 Gy)3T3-L1小鼠成纤维细胞(ATCC,马里兰州贝塞斯达,美国)喂食器。培养物保存在DMEM和火腿F12(Gibco)的1:1混合液中,并添加10%FCS、5μg/ml胰岛素、10 ng/ml霍乱毒素(Sigma)和10 ng/ml表皮生长因子(Sigmo)。如前所述,培养物保存在90%氮气/5%二氧化碳/5%氧气的环境中,以实现最佳克隆生长[8]. 培养8天后,将烧瓶固定在PBS中的0.5%戊二醛中,拍摄克隆体照片,然后用苏木精对烧瓶进行染色,以便计算菌落数。为了评估细胞制剂中成纤维细胞的污染程度,将细胞以克隆密度放置在25 cm2装有表达β-半乳糖苷酶的10T1/2(ATCC)喂料器的烧瓶(以区别于任何污染的成纤维细胞),或在4×104每25厘米2不带进料器的烧瓶,在DMEM/10%FCS中,并保持在5%CO中2/仅限空气。为了评估造血细胞的污染程度,在先前建立的骨髓源性细胞培养条件下培养小鼠乳腺SP细胞[10].
抗体和试剂
除非另有说明,否则所有试剂均来自Sigma。抗体LL002(抗细胞角蛋白14)、LE61(抗细胞角蛋白18)和LP2K(抗细胞蛋白19)是EB Lane赠送的礼物。抗体33A10(抗上皮膜抗原)和GoH3(抗α6整合素)是来自A Sonnenberg的实物礼物。抗波形蛋白V9和抗α同种型平滑肌肌动蛋白1A4购自Sigma。抗CD45抗体I3/2.3和荧光结合二级抗体购自剑桥生物科学公司(英国剑桥)。抗端粒酶催化亚单位抗体购自Calbiochem(英国诺丁汉)。抗雌激素受体抗体购自DAKO(英国伊利)。
Hoechst 33342细胞染色
小鼠骨髓和上皮细胞在10岁时再次悬浮6/将L15/10%FCS中的ml预加热至37°C(DMEM/10%FCS用于人类乳腺上皮细胞),并以5μg/ml的最终浓度添加Hoechst 33342(荷兰莱顿的分子探针)。以20μM的最终浓度将维拉帕米(Fluka;Sigma)添加到样品中,对小鼠乳腺SP细胞的毒性大于对骨髓细胞或人类乳腺SP细胞(数据未显示)。细胞在37°C下培养90分钟,偶尔搅拌。培养后,用冷培养基清洗细胞,并在(2–3)×10下重新悬浮6/ml,并将碘化丙啶(分子探针)添加至最终浓度2μg/ml。
流式细胞术
在BD FACSVantageSE细胞分选机(Becton Dickinson)上将细胞分选到试管中、聚-L-赖氨酸涂层载玻片(BDH;Merck Ltd,Lutterworth,UK)上或使用CloneCyto系统将细胞分选到培养板中。该机器配备了两个相干90 C-4氩离子激光器(相干,加利福尼亚州圣克拉拉,美国),一个可见光设置为488 nm,另一个多线紫外光学(333.6–333.8 nm)。Hoechst 33342荧光在424/44 nm和670 nm以上(由610 nm短程二向色镜分离)均通过UV激发进行测量。通过在564-606 nm处测量的碘化丙啶荧光来排除死细胞。
免疫荧光分析
细胞以500/孔的密度被镀在玻璃盖玻片上,盖玻片设置在24孔板上,每个孔有2000个辐照供料器,使用与前面描述的相同的生长条件。8天后,将盖玻片固定在冰镇50:50甲醇:丙酮中5分钟,然后进行染色。或者,直接将细胞分选到多-L-赖氨酸涂层的载玻片上,然后如前所述进行空气干燥和固定。如别处所述,细胞被多重间接免疫荧光染色[8]使用针对表中所示抗原的小鼠和大鼠初级单克隆抗体1以及与异硫氰酸荧光素或德克萨斯红结合的种、类和亚类特异性二级抗体(剑桥生物科学)。没有使用第一抗体对照筛查二级抗体的非特异性结合。其他对照显示,对小鼠乳腺SP细胞染色的一些初级抗体呈阴性。其中包括抗Ep-CAM(Ab4克隆ESA 43;IgG1),抗CD34(RAM34;IgG2a个K) ,抗c-Kit(CD117,克隆2b;IgG2亿K) 和FLK1(IgG2a个). 使用蔡司Axiovert倒置显微镜(英国韦尔文花园城卡尔蔡司有限公司)观察着色培养物并拍照。从照片中采集的细胞计数被用来确定明亮染色细胞的百分比。
清除脂肪通道移植
如前所述,将21天龄FVB小鼠移植到无上皮的第四乳脂肪垫中[9,11,12]. 如前所述,以不同数量移植新鲜收获的SP和非SP细胞。在收获或允许宿主动物交配之前,给移植动物8周的时间生长。从交配动物身上移植的脂肪垫在怀孕第17-18天收获。收获的腺体被固定,并被胭脂红染色为完整的坐骑。拍照后,将感兴趣的碎片从整体上解剖出来,嵌入石蜡块中,并用标准组织学技术进行H&E切片和免疫细胞化学处理。
ABC转运蛋白的RT-PCR分析
为了对乳腺上皮细胞中的多药耐药蛋白表达进行RT-PCR分析,使用Rneasy自旋柱分离RNA(英国克劳利QIAGEN有限公司)。根据制造商的说明,使用Sensiscript RT(QIAGEN)和寡核苷酸dT引物对约1000个细胞的RNA进行RT反应。平行进行无酶对照反应。对五分之一的RT或对照反应进行PCR扩增。分析4种ABC转运蛋白(乳腺癌耐药蛋白1、多药耐药相关蛋白1、耐药相关蛋白3和耐药相关蛋白4)的表达;这些引物的序列由Brian Sorrentino提供[6].