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基因表达。2002; 10(5-6): 231–242.
2018年5月31日在线发布。 数字对象标识:10.3727/000000002783992406
预防性维修识别码:项目经理5977521
PMID:12450215

九种在肝癌组织中表现出可变表达的新型人类小GT酶的鉴定和鉴定

摘要

消化和解毒是肝脏最重要的两项功能,肝细胞始终保持高代谢水平和活跃的水泡运输。膀胱交通系统的故障可能是癌性肝细胞生物学行为异常的原因之一。已知Ras超家族调节真核细胞中囊泡交通的各个步骤。研究Ras超家族成员等囊泡转运分子在肝细胞癌变过程中的变化具有重要意义。在本研究中,我们克隆了九个编码人类小GTPase的新基因:RAB1B、RAB4B、RAB10、RAB22A、RAB24、RAB25 ARL5、SARA1、和SARA2标准其中前六位属于RAB家族,后三位属于ARF/SAR1家族。这些新基因的鉴定大大扩大了Ras超家族的数量。有趣的是,在11例肝细胞癌和1例胆管癌病例中,它们大多上调。此外,还描述了这9个基因在16个正常成人组织中的表达、染色体位点和基因结构。上述结果对理解囊泡转运系统和阐明肝癌发生的分子基础具有重要价值。

关键词:RAB、ARF/SAR1、克隆、表达、肝癌

肝脏在脊椎动物的消化和解毒中发挥着至关重要的作用,肝细胞保持着高代谢水平和活跃的膀胱交通。然而,癌变常常损害肝细胞的功能。癌细胞的功能障碍可能与肝癌中水泡交通系统的异常有关。事实上,肿瘤细胞膜系统的结构经常发生变化。例如,在肿瘤细胞中,线粒体的数量、大小和结构与正常细胞不同。内质网经常扩大,排列异常。溶酶体的数量以及胞饮空泡状结构明显增加(10,23). 有趣的是,越来越多的数据表明,编码某些内吞相关蛋白的基因是人类造血恶性肿瘤中染色体重排的靶点,而一些内吞蛋白在人类癌症中的异常表达或突变已被报道,这表明内吞蛋白与癌症之间存在潜在的联系(11). 因此,全面描述囊泡转运的分子基础及其在肿瘤发生中的变化,对理解肝癌的病理学具有重要价值。

目前已知许多蛋白质参与囊泡转运,其中低分子量GTPases统称为Ras超家族,是一大类。它们在介导参与细胞增殖、分化和转化调节的多种信号转导途径中非常重要(1). 已知大量小GTPase调节真核细胞中囊泡交通的各个步骤(19). 这些小GTPase包括RAB/Ypt和ARF/SAR1家族的成员。蛋白质的活性GTP结合状态和非活性GDP结合状态之间的循环作为一个分子开关,参与运输囊泡的萌发、靶向和融合。

RAB蛋白构成小GTPases的最大家族。迄今为止,11个Ypt蛋白酿酒酵母(14)在哺乳动物细胞中发现了40多种RAB蛋白(包括异构体)。每种蛋白质都被认为在水泡交通中的一个或多个步骤中发挥作用。例如,在哺乳动物细胞中,RAB1A和RAB10在内质网向高尔基体和高尔基体内的转运中发挥作用,RAB4A和RAB4B在从内质体到质膜的再循环途径中发挥作用(18). 与最初认为RAB/Ypt蛋白主要与囊泡对接和融合有关的概念不同,越来越多的数据表明,RAB/Ypt-蛋白可能需要用于囊泡运输的每个过程,例如囊泡出芽(18)促进细胞骨架的运输(7,17).

ARF/SAR1是另一个小GTPase大家族。ARF蛋白最初根据其刺激霍乱毒素(CT)ADP-核糖基转移酶活性的能力进行识别和纯化(13,22)目前已知它们参与囊泡运输和磷脂酶D(PLD)的激活(1,6,15). 最具特征的例子是ARF1,它定位于高尔基复合体,是非板球蛋白和网格蛋白外壳募集的调节器。ARL是一类与ARF具有显著相似性的蛋白质。尽管它们具有同源性,但人们认为它们不能激活CT或PLD。然而,Hong等人发现,人类ARL1在某些条件下具有两种活动(12). ARL蛋白的生物学功能尚不清楚。SAR1 GTPase在酵母菌内质网(ER)向高尔基体转运的初始化过程中起着关键作用(6, 20, 21)在哺乳动物中,SAR1需要将P-COP招募到内质网并促进膀胱出芽(2). SAR1亚家族成员与RAB/Ypt家族进化距离较远,与ARF蛋白略有同源性。

尽管大量小GTPase已被证明或假定在囊泡转运中发挥作用,但该组仍在不断增长。由于我们对囊泡运输的分子基础的了解还远远不够令人满意,因此识别参与这一过程的其他成员对于阐明肿瘤发生中的分子机制和囊泡运输变化将具有重要意义。在这篇文章中,我们报道了九种人类小GTPase的鉴定及其在人类肝癌中的表达变化。此外,还描述了它们的染色体位点、基因结构和在正常成人组织中的表达模式。

材料和方法

癌症组织和总RNA提取

手术切除标本取自中国江苏省启东县肝癌研究所的12名中国男性患者。患者年龄从32岁到47岁不等。其中11例患者为III级分化的肝细胞癌(HCC),另一例患者为低分化胆管肝癌(CH)。所有患者均为乙型肝炎病毒(HBV)携带者,并经历了表皮浸润(HCC06除外)和癌栓(HCC11除外),但均未感染丙型肝炎病毒(HCV)。甲胎蛋白(AFP)值在3例(HCC01、HCC05和CH)中超过1000μg/L,1例(HCC4)中676.6μg/L、1例(HCC06)中410.6μg/L和其他病例中低于80μg/L。癌位为IV(HCC02)1例,II-IV(HCC11)1例和V-VIII(所有其他病例)。7例(CH、HCC03、HCC05、HCC06、HCC08、HCC09、HCC11)肿瘤大小小于6×6cm,其他病例肿瘤大小等于或大于6×6cm。切除的肿瘤标本和邻近的正常组织立即在液氮中快速冷冻并储存在−80°C。根据制造商批准的方案(Trizol试剂,Gibco BRL)获得肿瘤组织和正常组织的总RNA,然后在0.8×MOPS缓冲液中在2 V/cm电场下进行凝胶电泳。分离的总RNA随后转移到尼龙膜上,然后在80°C下干燥,然后在4°C下保存。

利用生物信息学方法选择和管理EST

从GenBank数据库中收集的RAB家族24个已知成员和ARF/SAR1家族9个已知成员的氨基酸序列分别进行了比对。每个家族中选择了两个高度保守的区域,然后使用这两个区域的一致序列用tBLASTn算法搜索EST数据库。如果EST与任一一致序列在80 bp以上具有至少40%的同源性,则认为同源性有意义。然后使用选定的EST,使用BLASTn算法搜索GenBank中的非冗余分割。选择那些与已知基因的DNA序列至少150 bp具有50-95%同源性的基因。然后将重叠的EST整合到contigs中,然后使用contigs再次搜索GenBank中的EST分区,以扩展5′端和3′端。

cDNA克隆

为了确认EST连接的序列,根据连接中假定ORF的侧翼序列合成了特异性引物(表1)对人cDNA文库(Clontech)进行PCR扩增。PCR系统为:在含有2.5μl 10×PCR缓冲液、0.5μl 0.02 mol/l dNTPs、0.75μl 2.5×10的25μl体积混合物中扩增1μl模板−3摩尔/升氯化镁2,和1个单位的Taq聚合酶(Promega)和0.5μl的2.5×10−2每种特定底漆的摩尔/升。PCR条件为94°C下初始变性步骤5分钟,然后在94°C条件下29个周期1分钟,在58–62°C下30秒,在72°C下额外延长步骤10分钟后,通过在4°C下培养终止反应。PCR产物纯化并直接测序后,将扩增片段重组到载体pGEM-T并转化为大肠杆菌JM109。从每种转化克隆中选择4个阳性克隆,提取质粒并用载体臂引物F进行测序2(5′-CGCAG GGT TTT CCC AGT CAC GAC-3′)和R2(5′-TCA CAC AGG AAA CAG CTA TGA C-3′。

表1

检测中使用的底漆

基因名称PCR中使用的引物(5′至3′)RH映射中使用的引物(5′到3′)
RAB1B型 A: CCGCCATGAACCCGAATAC公司右侧1:CTGTGCTGTTGCCTCTAGGTGAC
B: gggacat计算机RH2:GACTCCCTCCAGGCTCAACACAC公司
RAB4B型 A: ACCGAGTCTGAGACCTAC公司右侧1:CGTGTGGCTGCTGAGCTCTGTG
B: GGAGCTCTTGGGATATGTAGGRH2:ACTAGCAACAGCAGGCGATG公司
RAB10型 A: AGTGAGGAGTTGGCCGTAGTGAG公司右侧1:TGCTGCTGAGCATTCCCTGTTC
B: GGGTAGTGGATGGCAACTGATGG右侧2:GAATAGATTTGAAATATGCTATAGG
RAB22A型 A: GGCACATGGCGCTGAGGGAGCTC公司RH1:TCCATCCACTGAGCCAACCTG
B: 中国民航总署右侧2:ATCTTGATTACAAAAACTACTCAACAAC
RAB24型 A: ccgagcgagatcggggtttgc右侧1:TGAGTCAGCACTCACCTGTG
B: AGAGGACCTGGGGTAGCTCAGA公司RH2:GCAGACAAGTGCTGTCCAGGG(右二)
RAB25型 A: AACACAGATTTTGTCGCCTCTTG公司RH1:CAAGCAGACAGACAGCATC(右一)
B: GCATGAAGACCTTAGACCCTGAG公司右侧2:AGAGGTTATTGTGATGGCATG
SARA1标准 A: 关贸总协定RH1:TTAACACAAACTCACATTGGTTC
B: CTGAGTAAGCCTGAACGTTGAGACC公司RH2:TAACTGTAACTCTAAGATAGTG(右二)
SARA2标准 A: 全球气候变化框架右侧1:CACTGTGGGAGGTAATGCC
B: ACAGAGACTCTCTGGCTTCTCAAC公司RH2:CAGTGGAAACCTGCCACACATGC(右二)
ARL5型 A: TCTTCACTAGAATATGGACTG公司右侧1:CTCAGGACATTGTGTAGCCTATG
B: TCTATGAGAGAGTCAGAGAGAG公司重组人2型:agctcagcgatttgggagttg

北方杂交

小GTPase的基因特异性PCR片段用[α-32P] 用随机引物试剂盒(Amershan)将携带16种人类组织mRNA的MTN膜(Clontech)与携带12例中国HCC或CH患者总RNA的尼龙膜杂交。将膜在42°C的杂交/预杂交溶液(50%甲酰胺,5×SSPE,10×Denhardt溶液,2%十二烷基硫酸钠,100 mg/L小牛胸腺DNA)中预杂交24 h,然后与标记探针杂交另24 h,在杂交箱(英国Hybaid)中连续摇晃。然后在42℃的洗涤液(2×SSC,0.1%十二烷基硫酸钠;0.5×SSC(0.1%十二烷基苯磺酸钠)中对膜进行三次有序洗涤,然后在−70℃的X射线胶片下暴露5天。作为对照,MTN I和MTN II也在上述相同条件下与2.0 kbβ-actin cDNA杂交。杂交后,用增感屏在−80°C的X射线胶片上曝光4 h。用GDS-800(Bio-RAD)和Annustatin Grabber-1 T2.51扫描仪软件以及UVP Gelworks ID Advanced Version 2.51分析软件扫描放射自显影的杂交带。以总RNA电泳或β-肌动蛋白的结果作为对照,并进行类似扫描。

cDNA表达水平与总RNA水平或β-肌动蛋白标准化。

小GTPase的辐射杂交图谱和基因结构

在每个小GTPase cDNA的3′UTR处,设计了一对引物(表1). 这些引物被用于GB4辐射杂交细胞板(研究遗传学)的定型。PCR结果通过电泳检查,然后用于桑格中心的统计分析(http://sanger.ac.uk/Rhserver/Rhserver.shtml). 为了确定9个小GTPase的基因组织,进一步使用它们的cDNA在Gen-Bank的NR和HTGS区搜索匹配的人类基因组序列。通过将cDNA序列与相应的基因组序列对齐来确定每个基因的基因结构。

结果和讨论

RAB和ARF/SAR1家族同源EST的鉴定

通过比对已知人类RAB蛋白的序列,选择家族中两个高度保守的区域并用于生成一致序列(图1). 通过使用RAB家族的两个一致序列筛选人类EST数据库,发现约280个同源EST。如果EST在GenBank NR部门的BLAST搜索中具有至少95%的相同性,则认为它们是已知基因的一部分,因此被丢弃。相反,59个EST与任何已知的人类RAB基因共有50-95%的同源性,被认为是潜在的新RAB家族成员。具有重叠区域的EST被分组并组装成EST连接。通过搜索人类EST数据库中重叠的EST,将6个连续序列进一步扩展到5′端和3′端,最终生成完整的假定开放阅读框架(ORF)(表2).

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已知人类RAB和SAR1蛋白的氨基酸序列的比对。蛋白质的高度保守的残基显示在黑色阴影框中,类似的残基则显示在灰色阴影框中。(A) RAB家族的两个一致序列是通过对齐24个家族成员生成的,包括RAB1A(NM_004161)、RAB2(M28213)、RAB3A(NM-002866)、RAB3B(NM_002867)、RAB(NM-004578)、RAB5A(NM_0004162)、RAB5B(X54871)、RAB1C(NM_00.4583 _004251),RAB11A(NM_004663)、RAB11B(NM_004 218)、RAB1 3(NM_002870)、RAB27A(NM_00 4580)、RAB 27B(NM _004163)、RAB28(NM_0004249)、RAB30(NM_014488)、RAA31(NM_006868)、RAB32(NM_006 834)和RAB35(NM_0006861)。(B) ARF/SAR1家族的两个一致序列是通过对齐九个家族成员生成的,包括ARF1(NM_001658)、ARF3(NM_0001659)、ARF 4(NM_00660)、ARF1(NM_001662)、ARF2(NM_001177)、ARL2(NM-001667)、ARL3(NM-004311)和ARL4(NM-0001661)。

表2

九种小GTP酶的简介

基因账号。cDNA长度(bp)推导的蛋白质长度(aa)染色体位点BAC克隆外显子数量基因长度(kb)
RAB1B型 AF092437型10382012013年第11季度* AP000630型6>28.5
RAB4B型 AF087861型119321219季度13.2-13.3AC008537型8>20.0
RAB10型 AF086917型10712002p22.3-p23.1页AC011742型5>36.7
RAB22A型 AF125104型96619420季度13.3* HS20_2798型9>50.1
RAB24型 AF087904型911203第5季度35
RAB25型 AF274025型11282172012年第1季度第21季度AL355388号5>9.4
萨拉1 AF087850型12291985季度23-季度31.1AC016284型8>60.0
SARA2标准 AF274026型111219810季度21.3季度22.1电话0679666>81.7
ARL5型 AF087889型1299179第2季度第23季度第24.1季度AC069477型7>26.2

-:目前的人类基因组数据库中没有关于基因结构的信息。

*基因的细胞遗传学位置是指相应的基因组克隆的条目信息,或根据其条目信息进行细化。

同样的方法也适用于通过使用ARF/SAR1家族的两个一致序列搜索人类EST数据库发现的EST。在我们获得的286个EST中,34个与已知ARF/SAR1家族成员共有50-95%的同源性,被组装成3个EST连续序列,并进一步扩展以覆盖完整的假定ORF(表2).

九种小GTPase的克隆及命名

随后,用基因特异性引物进行PCR扩增,证实了9个连续基因ORF的可靠性(表2)和直接测序。ORF的核苷酸和推导出的氨基酸序列与已知的RAB或ARF/SAR1家族成员具有同源性,与上述两种共识探针对应的区域显示出高度同源性(图2). 因此,这九个新的cDNA被保存在Gen-Bank数据库中,并分别指定为RAB1B、RAB4B、RAB10、RAB22A、RAB24、RAB25、ARL5、SARA1、,SARA2标准根据HUGO命名委员会在哺乳动物中的同源基因。

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小GTPase保守区域的表示。与使用的两个一致序列相对应的区域如(A,RAB亚家族)和(B,ARF/Sar1亚家族)所示。每个图中的上部车道显示了亚科的两个一致序列。较低的车道显示了两个亚家族的新型小GTP的排列。蛋白质的高度保守的残基显示在黑色阴影框中,类似的残基则显示在灰色阴影框中。(C) 示意图显示了九个小GTPase中的保守结构域。

氨基酸序列分析

除了序列相似性外,在所有推导的蛋白质中还发现了其他一些序列特征。推导的蛋白质均包含四个高度保守的GTPase基序,即Gl[GxxxxGK(S/T)]、G2(T)、G3(DxxG)和G4[(N/T)(K/Q)xD](图2B). G1基序形成一个环,其中氨基酸的主链酰胺氢和赖氨酸的e氨基与GDP和GTP的α-和β-磷酸盐相互作用。此外,Gl中的丝氨酸/苏氨酸与Mg相互作用2+离子,与GTP的β-和γ-磷酸盐的氧配位,并与基序G2中高度保守的苏氨酸相互作用,通过H20分子,基序G3中有一个不变的天冬氨酸。G4基序与鸟嘌呤核苷酸环相互作用。因此,所有四个基序对鸟嘌呤·核苷酸结合和水解都至关重要(3,4,19,24,25).

大多数RAB蛋白在以下C末端序列基序之一中包含两个相邻的半胱氨酸残基:-XXCC、-XCXC或-CCXX,它们可以通过独特的RAB特异性香叶基香叶基转移酶进行香叶基化(9). RAB1B、RAB4B和RAB10也具有此结构特征。然而,人RAB24的香叶基香叶基化可能是低效的,因为它与小鼠RAB24共享相同的C末端,而小鼠RAB24被报道为低效的香叶基香叶基化,这可能部分是由于靶半胱氨酸远端存在两个组氨酸(8). 与常见的C末端序列基序不同,RAB22A和RAB25具有非常规的C末端(分别为-CCISL和-CCISL)。

与大多数其他小GTPase家族不同,ARF和SAR蛋白没有翻译后的戊基修饰。ARL5、SARA1或SARA2的C末端没有半胱氨酸。相反,他们的C末端部分被发现与ARF([HRQT]-x-[FYWI]-x-[LIVM]-x(4)-A-x(2)-G-x(2)-[LIVM]-x(2)-[GSA]-[LIVMF]-x-[WK]-[LIVM])和SAR1(R-x-[LIVM]-E-V-F-M-C-S-[LIVM](2)-x-[KRQ]-x-G-Y-x-E-[AG]-[FI]-x-W-[LIVM]-x-Q-Y)亚家族的一致特征模式相匹配分别为S。相应的段是H150QWHIQACCALTGEGLGLEWM公司172在ARL5、R中171请注意MCSVLKRQGYGEGFRWMAQY196在SARA1和R中171设备管理系统196在SARA2中。

肝癌组织中GTPases表达水平的改变

最近的研究认为内吞蛋白与癌症之间存在潜在联系(2). 考虑到RAB和ARF/SAR家族成员在中国膀胱交通和肝癌高发中的关键作用,我们测定了9个小GTPase在肝癌转录水平的表达变化(表3,图3). [α-32P] 用dATP标记的基因特异性探针杂交尼龙膜,将从肿瘤及邻近正常组织中提取的总RNA样本进行杂交。基因的表达水平通过电泳带的密度标准化,因为据报道β-肌动蛋白在肝癌中过度表达(5). 在每种情况下,小GTPase在肝癌中的过度表达被定义为在邻近正常组织中的表达水平超过1.5倍。肿瘤样本中大多数小GTPase的表达上调或保持不变。这些基因包括RAB1B型(9/11例中过度表达),RAB4B型(4/11),RAB10型(8/11),RAB22A型(7/10),RAB24型(9/11),以及ARL5型(5/11). 值得一提的是,尽管某些基因的过度表达在少数情况下似乎是有限的,但这在很大程度上是由于我们制定了严格的标准。事实上,在几乎所有的肿瘤病例中,所有七个基因都以不同的数量上调,当用t吨-测试(第页=0.01). 然而,小GTPase的过度表达似乎与病例的病理分级无关,如肿瘤大小、AFP值或坏死。它可能反映了癌症的病理要求,例如细胞的快速无限生长。值得注意的是,RAB1B、RAB24、,SARA1标准在11例癌症病例中有9例过度表达,这表明这些基因可能是HCC的标志物。

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九种小GTPase在肝癌中的表达变化。每张图显示了三例人类肝癌病例(HCC01–HCC03)和一例胆管肝癌病例(CH)的Northern杂交结果,其基因特异性cDNA探针标记为1至9。N: 正常周围组织,T:肿瘤组织。从组织中提取的总RNA的电泳图用作对照。

表3

九种小GT酶在肝癌中的表达变化

基因案例
HCC01公司HCC02公司中国HCC03公司HCC04公司HCC05公司HCC06型HCC07合同2008年肝癌HCC09合同肝癌10肝癌11
RAB1B型 ++++n个n个++++++
RAB4B型 n个++n个n个+n个n个+n个n个+
RAB10型 ++++n个++n个n个+++
RAB22A型 ++n个+n个n个n个n个++++
RAB24型 +++++n个+n个++++
RAB25型 +
SARA1标准 ++n个n个+++n个++++
SARA2标准 n个n个n个n个n个n个n个n个+
ARL5型 ++n个n个n个n个+n个+n个n个+

+:表达水平是周围正常组织的1.5倍以上。

−:表达水平低于周围正常组织的0.66倍。

n: 其表达水平是周围正常组织的0.66至1.5倍。

两个例外是SARA2标准RAB25.萨拉23例下调(肿瘤/正常密度比<0.67),1例上调,其余均保持不变。尽管目前我们未能确定其表达水平与病例病理背景之间的任何关系SARA2标准可能反映出案件之间的深层差异,需要进一步调查。至于RAB25型,在胆管肝癌中高表达,但在肿瘤性肝样本中下调。因此,研究是否在槽口25和胆管肝癌。

小GTPase的组织表达模式

以往的研究表明,大多数小GTPase广泛分布于正常人体组织中。然而,一些组织特异性或细胞类型特异性RAB已经被鉴定出来,通常在高分化细胞中,因此确定本文报道的小GTP酶的组织表达模式是有意义的。使用上述相同探针在MTN膜上进行北方杂交(图4A). 这些基因的表达水平通过β-肌动蛋白进行了标准化,并以图表形式显示出来(图4B). 在所有九个北方杂交中观察到两个不同长度的转录本,这是小GTPase家族成员常见的现象。结果还表明RAB1B、RAB4B、RAB10、RAB22A、ARL5、和SARA2标准在几乎所有被检测的16个组织中都有广泛表达,尽管表达量不同。

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九种小GTPase在成人组织中的北方杂交。同位素标记探针用于杂交MTN膜。每条通道包含2μg聚(A)+从成人人体组织中分离出的RNA。以人β-肌动蛋白cDNA为对照探针,对同一膜进行杂交。(A) Northern杂交的放射自显影结果。每个通道中的表达水平用β-actin标准化,并在(B)中图示。

与那些广泛表达的基因不同RAB24型胰腺、心脏和外周血白细胞含量高。的表达式RAB25型仅在胎盘、肺、肾、胰腺、前列腺、小肠和结肠中检测到。有趣的是,尽管SARA1标准SARA2标准在氨基酸水平上具有较高的序列相似性(89.4%),它们的表达模式不同。萨拉2普遍表达,而SARA1标准仅在心脏、肝脏、骨骼肌和睾丸中中度表达,在其他组织中表达极低。这一事实表明了它们在不同组织中的不同作用。组织特异性分布RAB24、RAB25、和SARA1标准提示这些蛋白质不仅参与囊泡运输的不同步骤,而且在各种组织中发挥特定作用。

基因的染色体位置和基因组结构

用RH作图法测定了9个小GTPase基因的染色体位点。通过扩增中国正常成人的基因组文库进行验证后,每对基因特异性引物用于GB4型面板。PCR结果被提交给桑格中心进行统计分析。图5示意图显示了9个基因的定位结果。

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九个小GTPase基因的RH图谱。利用多点RHMAPPER算法将每个基因定位在两个标记之间。标记的细胞遗传学定位参考GDB数据库中的综合图。

为了确定我们克隆的基因的基因组结构,我们使用cDNA序列在GenBank中筛选HTGS分区。然后将每个cDNA与相应的基因组序列对齐。表2概述了九种新型小GTPase的基因结构和染色体位点数据。

总之,我们鉴定了9个新的人类基因,它们属于小GTPase的RAB或ARF/SAR1亚家族。在通过Northern杂交检测的大多数人类HCC病例中,发现这些基因上调或保持不变。这些小GTPase的鉴定及其在肝癌中的改变表达可能有助于我们了解正常肝组织和肿瘤肝组织中的囊泡转运系统。

致谢

感谢江苏省启东市肝癌研究所朱元荣博士、黄建华博士、徐炳华博士、袁爱军博士和黄兴华博士在本研究中提供肿瘤样本。这项工作得到了国家973计划、863高技术计划(863-Z-02-04-01)和国家科学基金(3952501539680019)的支持。

参考文献

1巴巴酸M。ras基因.每年。生物化学评论。 56:779–827; 1987. [公共医学][谷歌学者]
2巴洛·C。;Orci L。;杨涛。;细渊明。;滨本S。;萨拉马北部。;雷克萨斯M.F。;拉瓦佐拉M。;Amherdt M。;舍克曼R。COPII:由Sec蛋白形成的膜外衣,驱动内质网中的囊泡出芽.单元格 77:895–907; 1994. [公共医学][谷歌学者]
三。伯恩·H·R。GTPases是否在分泌过程中引导膜交通? 单元格 53:669–671; 1988. [公共医学][谷歌学者]
4伯恩·H·R。;桑德斯D.A。;麦考密克F。GTPase超家族:多种细胞功能的保守开关.自然 348:125–132; 1990. [公共医学][谷歌学者]
5张天杰。;胡安·C·C。;尹培华。;Chi C.W。;蔡洪杰。N1S1大鼠肝癌中β-肌动蛋白、亲环素和GAPDH的上调.昂科尔。代表。 5(2):469–471; 1998. [公共医学][谷歌学者]
6查夫里埃·P。;古德B。ARF和Rab GTPases在膜转运中的作用.货币。操作。细胞生物学。 11:466–475; 1999. [公共医学][谷歌学者]
7埃查德A。;朱利韦·F。;马丁内斯·O。;拉卡佩尔·J·J。;罗塞莱特A。;Janoueix-Lerosey一世。;痛风B。高尔基相关运动蛋白样蛋白与Rab 6的相互作用.科学类 279:580–585; 1998. [公共医学][谷歌学者]
8埃德曼·R·A。;Shellenberger K.E。;奥弗迈耶·J·H。;马耳他W.A。Rab24是Rab GTPase家族的非典型成员。培养细胞中表达的GTPase活性不足、GDP解离抑制剂相互作用和Rab24的丙酰化.生物学杂志。化学。 275(6):3848–3856; 2000. [公共医学][谷歌学者]
9Farnsworth C.C。;Seabra M.C。;爱立信L.H。;盖尔布·M·H。;格洛姆塞特J.A。Rab香叶基香叶酰基转移酶催化小GTPases Rab1A、Rab3A和Rab5A中相邻半胱氨酸的香叶基香叶酰基化.程序。国家。阿卡德。科学。美国 91(25):11963–11967; 1994[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Feinmesser M。;Asa S.L。;科瓦茨K。;低M.J。转染促肾上腺皮质激素释放激素cDNA表达载体的甲状腺髓样癌大鼠肾上腺皮质的精细结构.《内分泌杂志》。 11:271–277; 1992. [公共医学][谷歌学者]
11弗洛伊德·S。;卡米利·P·。细胞内吞蛋白与癌症:潜在联系? 趋势细胞生物学。 8:299–301; 1998. [公共医学][谷歌学者]
12洪建新。;Lee F.J。;巴顿·W·A。;林春云。;莫斯·J。;沃恩·M·。人ADP-核糖基化因子样蛋白1(HARL1)对霍乱毒素和磷脂酶D的磷脂和GTP依赖性激活.生物学杂志。化学。 273(25):15872–15876; 1998. [公共医学][谷歌学者]
13.Kahn R.A。;吉尔曼A.G。霍乱毒素对腺苷酸环化酶刺激调节成分ADP-核糖基化所需蛋白辅因子的纯化.生物学杂志。化学。 259:6228–6234; 1984. [公共医学][谷歌学者]
14拉扎尔T。;哥特·M。;加尔维茨·D·。囊泡运输,一个真核细胞有多少Ypt/Rab GTP酶? 趋势生物化学。科学。 22:468–472; 1997. [公共医学][谷歌学者]
15莫斯·J。;Vaughan M。ARF蛋白的结构和功能:霍乱毒素的激活物和细胞内囊泡转运过程的关键成分.生物学杂志。化学。 270(21):12327–12330; 1995. [公共医学][谷歌学者]
16Nashikawa S。;中野A。GTP-结合Sar1蛋白定位于酵母分泌途径的早期隔室.生物芯片。生物物理学。学报 1093(2–3):135–143; 1991. [公共医学][谷歌学者]
17尼尔森E。;Severin F。;巴克尔·J·M。;海曼A.A。;Zerial M公司。Rab5调节微管上早期内体的运动.自然细胞生物学。 1:376–382; 1999. [公共医学][谷歌学者]
18诺维克·P。;Zerial M公司。Rab蛋白在囊泡转运中的多样性.货币。操作。细胞生物学。 9:496–504; 1997. [公共医学][谷歌学者]
19诺弗C。;巴尔奇W.E。GTPases,调节囊泡交通的多功能分子开关.每年。生物化学评论。 63:949–990; 1994. [公共医学][谷歌学者]
20Oka T。;西川S。;中野A。内质网向高尔基体转运中GTP-结合Sar1蛋白功能的重建.细胞生物学杂志。 114:671–679; 1991[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
21萨拉马N.R。;杨涛。;舍克曼R.W。Sec13p复合物和从内质网出芽的囊泡与纯化细胞溶质蛋白的重组.EMBO J。 12:4073–4082; 1993[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
22蔡S.C。;野田M。;阿达米克·R。;Chang P.P。;陈海川。;莫斯·J。;沃恩·M·。GTP和两种牛脑可溶性蛋白对霍乱弧菌酶活性的刺激作用.生物学杂志。化学。 263:1768–1772; 1988. [公共医学][谷歌学者]
23瓦德拉穆迪R.K。;王瑞安。;Talukder A.H。;亚当·L。;约翰逊·R。;库马尔·R。乳腺上皮细胞中Rab3A表达、囊泡运输调节和细胞分泌对海红蛋白反应的证据.分子细胞。生物。 12:9092–9101; 2000[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
24巴伦西亚A。;查丁·P。;Wittinghofer A。;桑德C。ras蛋白家族:进化树和保守氨基酸的作用.生物化学 30:4637–4648; 1991. [公共医学][谷歌学者]
25Wittinghofer A。;帕尔·E.F。Ras蛋白的结构:一个通用分子开关的模型.趋势生物化学。科学。 16:382–387; 1991. [公共医学][谷歌学者]

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