图6

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在培养基中添加四种dNTP的正常细胞和转化细胞的增殖分析。

如前所述,对正常(A)和转化(B)细胞系进行铺板。24小时后(表示为0小时),用正常培养基−4 mM谷氨酰胺-,然后在指定时间收集细胞并计数。在含有10%血清、4 mM或0.5 mM谷氨酰胺、dNTPs和BrdU的培养基中释放正常(左面板)和转化(右面板)细胞,并同步24小时血清饥饿,以进行连续DNA标记。在指定的时间点收集细胞,用碘化丙啶和抗BrdU特异性抗体进行染色,并用流式细胞仪进行分析。分别获得异步和0小时(时间0)时间点样本的代表性细胞图,绘制BrdU含量(标记细胞)与。PI染色(DNA含量)(图6 C-正常细胞和D转化细胞)。图中的红色表示S相电池。G中细胞的百分比1(面板E和F)、S(面板G和H)和G2/M(面板I和L)、在4 mM和0.5 mM谷氨酰胺中释放的正常(左侧面板)和转化(右侧面板)细胞的相,或通过上述双参数分析获得的加上dNTP的相。星号表示S或G2/在两种谷氨酰胺可用性中确定了M相峰值。误差条对应于三份分析的标准偏差。