研究交流\(第5em段)

期刊徽标结构生物学
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国际标准编号:2053-230X

CENP-SX-DNA复合物的生化和结晶分析

十字标记徽标

日本东京125-8585,Katsushika-ku,Niijyuku 6-3-1,东京科技大学(TUS)高级工程学院生物科学与技术系
*通信电子邮件:tnishino@rs.tus.ac.jp

编辑:A.Nakagawa,日本大阪大学(收到日期:2022年3月8日; 2022年4月7日接受; 2022年4月22日在线)

CENP-SX(MHF)复合物是一种保守的组蛋白折叠蛋白复合物,参与染色体分离和DNA修复。它可以自行与DNA结合,也可以与其他蛋白质(如CENP-TW和FANCM)复合,以识别特定底物。CENP-SX与dsDNA非特异性结合,类似于其他组蛋白折叠蛋白。已知CENP-SX与DNA复合物的几种低分辨率结构,但仍缺乏高分辨率结构。比较了不同长度dsDNA的CENP-SX和FANCM-CENP-SX复合物的DNA结合特性,发现其带移模式和迁移位置不同。为了详细确认DNA结合特性,结晶了CENP-SX–DNA和FANCM–CENP-SX-DNA复合物。对晶体的分析表明,无论结晶中使用何种络合物,它们都含有CENP-SX–DNA复合物。详细的衍射数据分析表明,有两种不同空间群的晶体,P(P)21C类2,其中P(P)21 非对称单元C类2非对称单元。对自转函数的分析表明,这两种晶体都存在双重和四重对称性。这表明可能存在CENP-SX和DNA的多个分子非对称单元具有各自的对称性。结构确定应揭示CENP-SX的DNA结合特性的详细信息。

1.简介

基因组完整性在所有生物中至关重要。尤其是真核生物,要经历有丝分裂和减数分裂细胞周期才能增殖并产生下一代。染色体分离和DNA修复在这些过程中起着关键作用。CENP-S(MHF1)–CENP-X(MHF2)(CENP-SX)复合物(也称为MHF复合物)是一种保守的组蛋白折叠复合物,参与这些过程(Milletti等。, 2020【Milletti,G.、Strocchio,L.、Pagliara,D.、Girardi,K.、Carta,R.、Mastronuzzi,A.、Locatelli,F.和Nazio,F.(2020)。《癌症》,第12期,第2684页。】; Kixmoeller公司等。, 2020【Kixmoeller,K.、Allu,P.K.和Black,B.E.(2020)。开放生物学10,200051。】). 在染色体分离中,它与另一个动粒成分CENP-T–CENP-W形成复合物,形成异四聚体CENP-TWSX复合物(Nishino等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]). 作为动粒机械的一部分,它在有丝分裂期间连接染色体和纺锤体微管(Kixmoeller等。, 2020【Kixmoeller,K.、Allu,P.K.和Black,B.E.(2020)。开放生物学10,200051。】). 在没有CENP-SX复合体的情况下,动粒结构变得异常,种族隔离问题变得突出(天野之弥等。, 2009[Amano,M.、Suzuki,A.、Hori,T.、Backer,C.、Okawa,K.、Cheeseman,I.M.和Fukagawa,T.(2009),《细胞生物学杂志》186、173-182。]). 在DNA修复过程中,CENP-SX复合体与FANCM相互作用,形成FANCM–CENP-SX复合体(Singh等。, 2010[Singh,T.R.,Saro,D.,Ali,A.M.,Zheng,X.-F.,Du,C.,Killen,M.W.,Sachpatzidis,A.,Wahengbam,K.,Pierce,A.J.,Xiong,Y.,Sung,P.&Meetei,A.R.(2010).分子细胞,37,879-886.]; 雁鸣声等。, 2010[Yan,Z.,Delannoy,M.,Ling,C.,Daee,D.,Osman,F.,Muniandy,P.A.,Shen,X.,Oostra,A.B.,Du,H.,Steltenpool,J.,Lin,T.,Schuster,B.,Décaillet,C.,Stasiak,A.,Stasiak,A.Z.,Stone,S.,Hoatlin,M.E.,Schindler,D.,Woodcock。C.、Myung,K.、Constantinou,A.和Wang,W.(2010年)。摩尔细胞,37865-878。]). FANCM是Fanconi贫血(FA)途径的核心成分,在其他蛋白质定位到DNA损伤位点(Milletti等。, 2020【Milletti,G.、Strocchio,L.、Pagliara,D.、Girardi,K.、Carta,R.、Mastronuzzi,A.、Locatelli,F.和Nazio,F.(2020)。《癌症》,第12期,第2684页。】).

对纯化的CENP-SX复合物的生化分析表明,它形成了类似组蛋白H3/H4(Nishino)的异四聚体等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]; 等。, 2012[陶毅、金川、李旭、齐旭、朱旭、牛旭、姚旭、滕明(2012),《国家公报》第3782页。]). 它使用组蛋白折叠和CENP-S(Nishino)C末端的基本尾部与dsDNA结合等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]). 有趣的是,CENP-SX复合物与DNA的结合模式表明,它形成了一个规则间隔的蛋白质-DNA复合物,并且蛋白质的数量随着DNA长度的增加而增加。有趣的是,将CENP-TW添加到CENP-SX–DNA混合物中会导致这些常规结合模式的丢失,而CENP-TWSX复合物更倾向于与~100 bp dsDNA结合。纯化的人类FANCM–CENP-SX复合物已被证明比dsDNA更倾向于与分支分子结合(Tao等。, 2012[陶毅、金川、李旭、齐旭、朱旭、牛旭、姚旭、滕明(2012),《国家公报》第3782页。]; 福克斯等。2014年[Fox,D.,Yan,Z.,Ling,C.,Zhao,Y.,Lee,D.,Fukagawa,T.,Yang,W.和Wang,W.](2014)。细胞研究24,560-575). 低分辨率晶体结构人CENP-SX与26 bp dsDNA复合物的研究表明,CENP-SX利用其组蛋白折叠区和C末端基本尾部区域与dsDNA结合(Zhao等。2014年[Zhao,Q.,Saro,D.,Sachpatzidis,A.,Singh,T.R.,Schlingman,D.,Zheng,X.-F.,Mack,A.,Tsai,M.-S.,Mochrie,S.,Regan,L.,Meetei,A.R.,Sung,P.&Xiong,Y.(2014),《国家公报》第5卷,第2987页。]). 每个CENP-SX二聚体与单独的dsDNA双链结合,整体形状类似于分支DNA分子。然而,CENP-SX的规则间隔DNA结合和分支DNA结合机制仍不清楚。

在这里,我们使用鸡CENP-SX和FANCM-CENP-SX复合物,尝试对其与DNA的复合物进行高分辨率结构分析。我们使用不同长度的dsDNA获得了几个CENP-SX–DNA晶体,其中一些衍射分辨率为~3.2º。这些晶体可以分为两个不同的空间群,每个空间群包含多个分子非对称单元。这个空间组单位-细胞参数与报道的复杂晶体结构不同。因此,确定晶体结构应披露识别模式的详细信息。相位确定和进一步精炼CENP-SX的DNA结构目前正在进行中。

2.材料和方法

2.1. 大分子生产和电泳迁移率移位分析(EMSA)

FANCM–CENP-SX是根据之前的研究编制的,用全长CENP-S替换截断的CENP_S(伊藤和西野,2021年[Ito,S.&Nishino,T.(2021),《水晶学报》F77,1-7。]; 表1[链接]). CENP-SX是根据之前的报告(西野等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]). 合成寡核苷酸基于Widom 601序列,从赛默飞世尔公司购买。通过对互补DNA进行热退火,制备了双标记DNA寡核苷酸。dsDNA通过以下方法进一步纯化尺寸排除色谱法10米M(M)Tris pH值7.5100 mM(M)氯化钠。

表1
大分子生产信息

重点介绍了其他残基的引入、表达和纯化标签以及TEV识别位点。解理部位用斜线表示。

  风扇控制模块–CENP-SX 欧洲标准化委员会-SX
源生物 五倍子 五倍子
DNA来源 cDNA cDNA
克隆载体 pMal-c2X型 pRSF用户-1
表达式向量 pMal-c2X型 pRSF用户-1
表达式宿主 大肠杆菌一次性BL21(DE3)pLysS RARE2 大肠杆菌一次性BL21(DE3)pLysS RARE2
所产生结构的完整氨基酸序列
欧洲标准化委员会(CENP-S) 毫克/千克EAAGGEQRELLIQRRAAVHYTTGALAAQDVAEDKGVLFSKTQTVAAISEITFRQAENFARDLEMFARHAKRSTITSEDVKLLARRSNSLLKYITQKSDELASSNMEQKEKKKSSAAKGRKTENETPVTEDSNMA公司 毫克/千克EAAGGEQRELLIQRRAAVHYTTGALAAQDVAEDKGVLFSKTQTVAAISEITFRQAENFARDLEMFARHAKRSTITSEDVKLLARRSNSLLKYITQKSDELASSNMEQKEKKKSSAAKGRKTENETPVTEDSNMA公司
欧洲标准化委员会-X MYWSHPQFEKENLYFQ/GY公司EEREGGFRKETVERLLRLHFRDGRTRVNGDALLMAELLKVFVREAAAARQAQAEDLEKVDIEHVEKVLPQLLDF(EEREGFRKETVERLL RLHFRDRGRTRVNGDALLLMAELLKVFFVREAAARAARQAEDLEVVDIEVEKVVLPQLDLLDF)V(V) MYWSHPQFEKENLYFQ/GY公司EEREGGFRKETVERLLRLHFRDGRTRVNGDALLMAELLKVFVREAAAARQAQAEDLEKVDIEHVEKVLPQLLDF(EEREGFRKETVERLL RLHFRDRGRTRVNGDALLLMAELLKVFFVREAAARAARQAEDLEVVDIEVEKVVLPQLDLLDF)V(V)
风扇控制模块 MKIEEGKLVINGDKGYNGLAEVGKKFEKDTGIKVTVEHPDKLEEKFPQVAATGDGPDIIFWAHDRFGGYAQSGLLAEITPDKAFQDKLYPFTWDAVRYNGKLIAYPIAVEALSLIYNKDLLPPKTWEEIPALDKELKAKGKSALMFNLQEPYFTWPLIAADGYAFKYENGYKYYKDVGVDNAGAKAGLTFLVDLIKHMTDYSIAEAAFNKGETAMTINGWAWSNIDTSKNYGVTVGVLSKPFVGVLSAGINASAGINASSPNKEKEFLENYLLLTDEGLEAVNKDKPAVA LKSYEEELAKDPRIAATMENAQKGEIMPNIPQMSAFWYAVRTAVI公司NAASGRQTVDEALKDAQTNSSNNNNNNNNLGIEGRHHHHHENLYFQ/GENLYFQ/GENLYFQ/希腊SLHHKSALFSCVTDPKEMHCHENWSLSPEEFEIW DRLYRLKENDGVKEPILPHTRLENLDKTSKPEEEAHKLSLEWSIWQSRPFTPTSMVDHSDRCYHFISVMELIEVMMRQEQGCSYELELLQPHRIEDIHVRRNGHLSP(P)  

EMSA的执行如前所述(西野等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]). 简单地说,CENP-SX四聚体或FANCM–CENP-SX五聚体(1.25µM(M))与不同长度(1.25µM(M))在42°C的温度下,在结合缓冲液(10 m)中保持60 minM(M)Tris–HCl pH值7.5100 mM(M)氯化钠)。用10-20%梯度天然聚丙烯酰胺凝胶电泳(Wako)分析混合物,并用溴化乙锭染色。

2.2. 结晶

为了形成蛋白质-DNA复合物,将蛋白质和DNA的混合物在20°C下培养60分钟。使用Natrix和Natrix 2(Hampton Research)在96-well格式结晶板中通过坐滴蒸汽扩散技术对FANCM–CENP-SX–dsDNA进行初始结晶筛选。滴液的最终体积为0.2µl,含0.1µl贮存溶液和蛋白质–DNA复合物,并在20°C的恒定温度下培养平板。初始晶体是在两种条件下获得的:Natrix条件No.12(25%MPD,20 mM(M)硫酸镁4,50米M(M)羧酸盐pH 6.0),使用31 bp DNA和Natrix 2条件29号(30%1,4-二氧六环,10 mM(M)氯化镁2,2米M(M)氯化钠2,50米M(M)MOPS pH 7.0),使用19–49 bp DNA。对于衍射分析,将1,4-二氧六环替换为30%的MPD,并使用30%的乙二醇对晶体进行冷冻保护。

使用29–31 bp DNA进行CENP-SX–dsDNA结晶。为了改善结晶,改变蛋白质和DNA的混合比例、DNA长度和悬垂结构。最佳结晶条件为20mM(M)MES–氢氧化钠pH 6.5,40%MPD,100 mM(M)氯化钠,使用20%乙二醇和15%二甲基亚砜(DMSO)进行低温保护。

表2中总结了具有改进衍射质量的CENP-SX–dsDNA晶体的生产条件[链接].

表2
结晶

方法 蒸汽扩散,坐滴 蒸汽扩散,坐滴
板材类型 CrystalQuick Greiner板,3孔,圆形 CrystalQuick Greiner板,3孔,圆形
温度(K) 293 293
蛋白质浓度(µM(M)) 50(FANCM–CENP-SX五聚体) 150(CENP-SX四聚体)
DNA浓度(µM(M)) 55 55
蛋白质缓冲液成分–DNA溶液 10米M(M)MOPS–NaOH pH 7.0,110 mM(M)氯化钠,0.5米M(M)数字电视 10米M(M)Tris–HCl pH值7.5,110 mM(M)氯化钠
储层溶液的组成 50米M(M)MOPS–NaOH pH 7.0,31%1,4-二恶烷,10 mM(M)氯化镁2,110米M(M)氯化钠 20米M(M)MES–NaOH pH 6.5,40%MPD,100 mM(M)氯化钠
储液罐容积(µl) 100 100
跌落体积和比率 2微升(1:1) 2微升(1:1)
收获溶液的组成 50米M(M)MOPS–NaOH pH 7.0,40%MPD,10 mM(M)氯化镁2,110米M(M)氯化钠
防冻剂 50米M(M)MOPS–NaOH pH 7.0,30%MPD,10 mM(M)氯化镁2,110米M(M)氯化钠,30%乙二醇 20米M(M)MES–NaOH pH 6.5,40%MPD,100 mM(M)NaCl、20%乙二醇、15%二甲基亚砜

2.3. 数据收集和处理

衍射数据在光子工厂(PF)同步加速器设施(KEK)的BL-1A上收集,并用香港(HKL)-2000包(HKL Research)或XDS公司(卡布施,2010年【Kabsch,W.(2010),《结晶学报》,D66,125-132。】). 数据分析使用摩尔代表来自中央对手方清算所4套房(优胜者等。, 2011[Winn,M.D.,Ballard,C.C.,Cowtan,K.D.,Dodson,E.J.,Emsley,P.,Evans,P.R.,Keegan,R.M.,Krissinel,E.B.,Leslie,A.G.W.,McCoy,A.,McNicholas,S.J.,Murshudov,G.N.,Pannu,N.S.,Potterton,E.A.,Powell,H.R.,Read,R.J.,Vagin,A.&Wilson,K.S.(2011),《基督学报》,D67,235-242。]). 表3总结了数据收集和处理统计数据[链接].

表3
CENP-SX–dsDNA的数据收集和处理

括号中的值用于外壳。

衍射光源 BL-1A、PF BL-1A、PF
波长(Ω) 1.1 1.1
探测器 爱格 爱格
“空间”组 P(P)21 C类2
,b条,c(Å) 100, 81.6, 110 127, 81.5, 100
α,β,γ(°) 90, 106, 90 90, 124, 90
镶嵌度(°) 0.095 0.095
分辨率范围(Ω) 44–3.6 (3.7–3.6) 44–3.2 (3.3–3.2)
反射总数 69125 (7187) 49154(5154)
独特反射次数 20200 (2012) 14264 (1425)
完整性(%) 98.7 (99.5) 99.3 (99.4)
多重性 3.4 (3.6) 3.4 (3.6)
/σ()〉 13.0 (4.7) 24.6 (7.2)
R(右)合并 0.054 (0.23) 0.031 (0.16)
R(右)测量 0.065 (0.28) 0.038 (0.19)
R(右)下午。 0.035 (0.15) 0.020 (0.10)
总体BWilson图中的因子(λ2) 110.9 99.5
科科斯群岛1/2 0.99(0.96) 0.99 (0.98)
抄送* 1 (0.99) 1 (0.99)

3.结果和讨论

鸡和人CENP-SX定期结合单个dsDNA,而人FANCM-CENP-SX更喜欢分支分子(Nishino等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]; 福克斯等。2014年[Fox,D.,Yan,Z.,Ling,C.,Zhao,Y.,Lee,D.,Fukagawa,T.,Yang,W.和Wang,W.](2014)。细胞研究24,560-575; 等。2014年[Zhao,Q.,Saro,D.,Sachpatzidis,A.,Singh,T.R.,Schlingman,D.,Zheng,X.-F.,Mack,A.,Tsai,M.-S.,Mochrie,S.,Regan,L.,Meetei,A.R.,Sung,P.&Xiong,Y.(2014),《国家公报》第5卷,第2987页。]). 为了更详细地比较结合模式,我们使用基于Widom 601序列的不同长度(19–97 bp)的合成dsDNA对鸡CENP-SX和FANCM–CENP-SX进行了EMSA。与之前的报告一致,CENP-SX–DNA带的数量随着DNA长度的增加而增加(图1[链接]; 西野等。, 2012[西野,T.,武内,K.,加斯科因,K.E.,铃木,A.,Hori,T.、Oyama,T.和Morikawa,K.(2012年)。细胞,148487-501。]). 考马斯染色证实,共有四条移位带[1(快速迁移带)至4(缓慢迁移带)],其中包含CENP-SX或FANCM-CENP-SX。CENP-SX-DNA复合物的条带1在19bp的dsDNA中不存在,在25bp至97bp的dsDNA中开始出现微弱的条带。带2也从25 bp的双链DNA开始出现,其强度从49 bp的双序列DNA急剧增加,并在61 bp的双串DNA处达到峰值。有趣的是,波段2的强度比波段1的强度更强、更尖锐。带3与带2相似,从67 bp的dsDNA开始出现。带4只出现在97 bp的dsDNA上。FANCM–CENP-SX–DNA条带出现类似;然而,带1的强度比CENP-SX–DNA的强度更强、更尖锐。其他条带强度较低,并被涂抹。这些结果表明,在FANCM存在和不存在的情况下,CENP-SX的DNA结合模式和化学计量比不同。

[图1]
图1
DNA结合模式()CENP-SX四聚体和(b条)FANCM–CENP-SX五聚体到不同长度的dsDNA。()CENP-SX的EMSA(1.25µM(M))带有19、25、31、37、43、49、55、61、67、73、79、85、91和97 bp dsDNA(1.25µM(M)). (b条)FANCM的EMSA–CENP-SX(1.25µM(M))具有相同的一组dsDNA(1.25µM(M))如中所用(). 蛋白质-DNA复合物带也相应编号。

为了描述这两种复合物之间DNA结合的差异,我们在dsDNA(19、25、31、37、43和49 bp)存在下进行了结晶实验。无论使用的DNA长度如何,FANCM–CENP-SX–DNA晶体在30%1,4-二氧六环的存在下出现。晶体的形状因DNA的长度而异(图2[链接]). 使用19、25和31 bp dsDNA形成矩形晶体。使用37、43和49 bp dsDNA出现针状晶体。用两种不同的方法分析晶体的含量。将DNA染色的绿色荧光染料添加到晶体滴中,导致晶体发出绿光(图3[链接]). SDS–PAGE分析表明,晶体中含有CENP-S和CENP-X,而没有FANCM(图3[链接]b条). FANCM以薄膜状结构存在于晶体液滴的气液界面中。这种情况与之前的报告类似,其中观察到FANCM在有机溶剂和氧化条件下与CENP-SX分离(Ito&Nishino,2021[Ito,S.&Nishino,T.(2021),《水晶学报》F77,1-7。]). 因此,即使在DNA存在的情况下,FANCM在结晶过程中也与CENP-SX分离。使用具有相同沉淀剂的CENP-SX和DNA混合物复制CENP-SX-DNA晶体的尝试失败,结晶条件得到了优化。CENP-SX–DNA晶体在40%MPD存在下出现。

[图2]
图2
使用不同长度的dsDNA获得的FANCM–CENP-SX–DNA复合物晶体。()19个基点(b条)25个基点(c)31个基点(d日)37bp(e(电子))43个基点((f))49个基点。比例尺长度为0.2 mm。
[图3]
图3
FANCM–CENP-SX–DNA复合晶体分析。()用荧光DNA染色染料分析晶体。荧光图像以灰度显示。箭头表示染色晶体。(b条)左图:通过15%SDS–PAGE对各成分进行分析。凝胶用考马斯亮蓝染色。右:坐滴结晶装置示意图,显示晶体、溶液和薄膜。

初始晶体衍射至~7º分辨率,镶嵌性高。DNA和低温保护剂的优化提高了分辨率(图4[链接]). 数据分析表明,存在两种不同的晶体,具有不同的空间群和单位-细胞参数。这些晶体都是长方形的,根据形状无法区分。一个水晶属于空间组 P(P)21,带有单位-细胞参数= 101,b条=84,c= 112 Å,α= 90,β= 105,γ= 90°. 另一块水晶属于空间组 C类2,带晶胞参数= 128,b条= 81,c= 100 Å,α= 90,β= 124,γ=90°(表3[链接]). 这两种晶体的不对称单元的体积相差两倍。Matthews对这两种晶体的分析表明C类2和P(P)21晶体分别含有~80 000和~160 000 Da,计算出的马修斯系数为2.7ºDa公司−1溶剂含量为60%。这些结果表明,多个CENP-SX异二聚体和DNA存在于非对称单元。这种情况类似于以前的低分辨率CENP-SX–DNA复合晶体结构,其中形成了几个不同的晶体,不对称单元中存在多个分子。

[图4]
图4
X射线衍射图像P(P)21(左)和C类2(右)CENP-SX–日本光子工厂BL-1A上收集的DNA复合晶体。圆圈表示分辨率为3°。

为了分析CENP-SX的多个分子与晶体内DNA之间的关系,计算了自旋转函数。在这两个P(P)21C类2个晶体,在交流电90°平面上的平面和四倍峰值(图5[链接])观察到。这种双重对称性可能是由于CENP-SX四聚体的对称性。或者,可能存在一个双折叠对称的CENP-SX–DNA复合物,类似于所报告的复合物结构,其中CENP-SX-二聚体–dsDNA复合物通过双重对称性相关(Zhao等。2014年[Zhao,Q.,Saro,D.,Sachpatzidis,A.,Singh,T.R.,Schlingman,D.,Zheng,X.-F.,Mack,A.,Tsai,M.-S.,Mochrie,S.,Regan,L.,Meetei,A.R.,Sung,P.&Xiong,Y.(2014),《国家公报》第5卷,第2987页。]). 然而,对四倍峰值的解释仍然难以捉摸。EMSA分析显示,多个CENP-SX四聚体与离散长度的dsDNA结合。结构确定应该揭示识别机制的细节。模型建筑和结构精炼目前正在进行中。

[图5]
图5
的自转功能P(P)21(顶部)和C类2(底部)CENP-SX–DNA晶体。摩尔代表用于计算。检查χ=180°和90°截面表明两种晶体中存在双重和四重对称性。

致谢

我们要感谢Takuji Oyama博士在晶体分析方面提供了有益的建议。我们要感谢KEK-PF同步加速器设施的工作人员在数据收集方面的帮助。同步加速器实验经光子工厂项目咨询委员会批准(提案编号:2016G180、2018G113和2020G116),并经日本同步辐射研究所(JASRI)批准在SPring-8的BL44XU进行;提案编号:2017A6737、2017B6737、2018 A6838、2018 B6838、2019A6935和2020A6535)。

资金筹措信息

本研究的资金由日本科学促进会提供(西野达也批准号16K07279和20K06512);支持药物发现和生命科学研究的平台项目(BINDS;授予西野达也1739号);NIG-JOINT(授予西野达也第6A2017、2A2018和85A2019号);大阪大学蛋白质研究所合作研究项目(授予西野达也CR-17-05、CR-18-05和CR-19-05号)。

工具书类

第一次引用Amano,M.、Suzuki,A.、Hori,T.、Backer,C.、Okawa,K.、Cheeseman,I.M.和Fukagawa,T.(2009)。《细胞生物学杂志》。 186, 173–182. 交叉参考 公共医学 中国科学院 谷歌学者
第一次引用Fox,D.、Yan,Z.、Ling,C.、Zhao,Y.、Lee,D.、Fukagawa,T.、Yang,W.和Wang,W..(2014)。细胞研究。 24, 560–575. 交叉参考 中国科学院 公共医学 谷歌学者
第一次引用Ito,S.&Nishino,T.(2021)。《水晶学报》。F类77, 1–7. 交叉参考 IUCr日志 谷歌学者
第一次引用Kabsch,W.(2010年)。《水晶学报》。D类66,125–132科学网 交叉参考 中国科学院 IUCr日志 谷歌学者
第一次引用Kixmoeller,K.、Allu,P.K.和Black,B.E.(2020年)。打开Biol。 10, 200051. 交叉参考 公共医学 谷歌学者
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