1.简介
原子分辨率结构信息对我们理解基本生物过程至关重要,在药物和化学生物探针的开发和改进中发挥着越来越重要的作用。高分子晶体学(MX)是获取此类信息的最有效方法之一。然而,MX可能受到相位问题(泰勒,2003年)以及为了数据收集而生长大单晶的必要性。传统上,晶体学数据的定相需要重原子浸泡或衍生,且晶体尺寸大于100µm。使用较小的1–20µm样品具有许多优点,包括减少晶体优化所需的时间和材料,特别是对于具有挑战性的项目,如膜蛋白项目。它还可以更均匀地浸泡重原子或配体,并在光泵-探针实验中提供更完整的照明。微焦点同步辐射束线的增殖(南澳等。, 2022; 长谷川等。, 2013; 埃文斯等。, 2007)先进的数据收集/分析方法有助于从这些较小的晶体进行测量;然而,辐射损伤使得从单个微晶收集完整、高质量的数据集极为困难(Holton&Frankel,2010). 这个问题的答案似乎是串行/多晶体方法,如同步加速器串行晶体学(SSX),其中来自多个晶体的数据被合并成一个单一的数据集(Gati等。, 2014; 斯特拉托等。, 2014; 博塔等。, 2015; 赞德等。, 2015; 长谷川等。, 2017). 事实上,近年来,将串行方法与强微束相结合,使晶体尺寸的界限得以突破。然而,多晶体方法确实付出了巨大的代价:晶体之间的自然变化(“非同构”)会降低最终合并数据集的质量(佐丹奴等。, 2012)这对于分阶段应用程序来说是一个特殊的挑战。
实验大分子晶体学定相的最早方法之一是单一的同晶置换(SIR)方法(克里克和马多夫,1956; 绿色等。, 1954),其中数据收集自重原子浸泡的晶体和未浸泡的“天然”晶体。强度之间的差异用于确定重原子的位置,然后可用于实验确定天然蛋白质数据的相位。SIR提供了潜在的非常大的强度差异的优点,这反过来又可以提供非常大的定相功率。然而,由于天然和重原子诱导的非同构现象,其在多晶体方法中的应用非常复杂。事实上,由于非同构引起的强度差异通常大于重原子结合引起的信号。因此,迄今为止,SIR在多晶体实验中相对少见,而现有工作主要针对自由电子激光器(Botha等。, 2015; 山下等。, 2015; Nakane公司等。, 2016; 张等。, 2015). 除了非同构问题外,SIR的实际局限性是,成功的SIR实验通常需要从许多样品中制备和收集衍射数据,以便识别重原子占有率和同构性足够高的晶体组,同时保持足够的衍射质量。此过程通常会消耗大量人力和波束时间。
配体浓度的时空梯度已经过模拟和实验证明(科尔等。, 2014; 杰雷米亚等。, 2006; 潘迪等。, 2021; 水谷等。, 2014; 施密特,2013). 我们推断,如果可以建立不同重原子占用率的人口,我们可以使用遗传算法基于(GA)的分组技术(Zander等。, 2016; Foos公司等。, 2019; Cianci公司等。, 2019)区分衍生数据集和本地数据集。事实上,这里我们报告了一种方法,在SSX数据采集之后进行单重原子浸泡。A类遗传算法然后用于分组数据集,这些数据集可用于通过SIR实验成功确定相位。
2.方法
2.1. 样品制备
分析了四种不同重原子衍生的蛋白质微晶。批量生长大小在5至20µm之间的溶菌酶晶体:40 mg ml−1溶菌酶溶液是在含有1.5M(M)氯化钠,0.1M(M)乙酸钠pH 4.6,30%聚乙二醇5000。采用吊滴蒸汽扩散法获得蛋白酶K、胰岛素和嗜热菌蛋白酶晶体。以50 mg ml制备蛋白酶K晶体−150米M(M)HEPES pH 7.0,含0.5–1.5的良好溶液M(M)硝酸钠,100米M(M)柠檬酸盐pH 6.5。将胰岛素溶解至15 mg ml−150米M(M)纳2高性能操作4pH值10.4,1mM(M)EDTA pH 8.0,在350–450 m内结晶M(M)纳2高性能操作4pH值10.4,10 mM(M)EDTA公司。以50 mg ml制备嗜热菌蛋白酶−1在50米内M(M)MES pH 6.0,含45%二甲基亚砜,井液含35%(周/v(v))溶于水中的硫酸铵;将蛋白质溶液与微孔溶液以1:1的比例(马歇尔等。, 2012). 所有晶体均在20°C下获得。在硅化盖玻片之间压碎大的(100–500Å)晶体,以获得5至20µm的微晶尺寸范围。Gd-HPDO3A储备溶液(钆替啶;Girard等。, 2002)、醋酸汞(II)、硝酸钐(III)和碘化钠在25 m的水中生成M(M),20米M(M),5米M(M)和1M(M)分别是。将这些储备添加到甘油(最终浓度为25%)和井液中,以获得最终重原子浓度为2 m的浸泡缓冲液M(M),5米M(M), 667 µM(M)和400米M(M)分别是。使用具有10µm开口的700µm直径微孔将微晶浆料转移到2µl这些浸泡溶液中(MiTeGen)。由于非结晶蛋白质对重原子结合的竞争,晶体转移可能比直接向结晶液滴中添加重原子更好。根据以往对较大晶体进行非系列SIR实验的经验,重原子浸泡时间分别为5分钟、4分钟、1分钟和30秒。实际上,可以通过为多个筛孔设置足够数量的浆液,然后在几个时间点去除浆液,再在微孔上收集浆液并在液氮中闪蒸冷却来确定浸泡时间。
4.总结与展望
在这里,我们将最新的分析方法应用于单个同晶置换,从而产生了一种具有独特优势的方法。该方法可以使用单个重原子浸泡和样品架的数据来执行,大大简化了SIR实验。样品制备后,使用现有的自动化工作流进行数据收集,例如网格和集合(赞德等。, 2015). 这样的数据收集策略需要某种方法来分离原生数据集和派生数据集。为此,我们使用了CODGAS公司GA,事实上已经证明,这种方法可以用于识别两组内部同构数据集,并且这些数据集之间的强度差异可以成功用于从头开始SIR相位测定。值得注意的是,我们使用了性能良好的测试系统,这种方法的局限性还有待观察,尤其是在最小分辨率和较低对称性方面。
已经设想了几项改进。当前目标函数仅适用于合并统计信息,但也可以使用下游阶段化步骤中的度量。例如,首次尝试使用SHELXD公司 下部结构已经研究了解决方案。然而下部结构适用于目标函数的正确性尚未确定。例如,通常使用的CC(all)和CC(weak)指标似乎无法在虚假解决方案和真实解决方案之间提供足够的区分。此外,与此方法相关的计算成本很高。在这项工作中,我们只关注同构相位,但通过组合序列反常散射(梅尔尼科夫等。, 2017)使用SIR(SIRAS)也可以提高成功率,这一点目前正在研究中。如果存在异常信号,也可以用于确定哪些数据集是原始数据集,哪些是派生数据集。然而,强异常信号并不总是可用的,这取决于元素和波束线的特性。
在这项工作中,我们通过使用相对低的剂量,在很大程度上忽略了辐射损伤效应。在某些情况下,特定辐射损伤可用于相位调整(Banumathi等。, 2004; 南澳等。, 2005; 希尔茨等。, 2004; 拉韦利等。, 2003; Nanao&Ravelli,2006年; de Sanctis&Nanao,2012年). 这项技术可以大致视为“反向”SIR实验。我们之前已经证明,辐射损伤诱导的相位调整在系列实验中是可能的(Foos等。, 2018). 这项工作采用了网格和集合重复从同一晶体收集数据以获得高剂量和低剂量数据集的工作流程。然而,晶体之间的差异辐射损伤也可能与此处使用的重原子占用率梯度类似。这将取消对同一晶体进行多次收集的要求。
适用性聚类分析(CA)基于强度和/或单位-细胞参数的相关性(佐丹奴等。, 2012; 圣托尼等。, 2017; 福迪等。, 2013; 线路接口单元等。, 2011)或使用更复杂的方法XSCALE_ISOCLUSTER(XSCALE_隔离群集)和XDSCC公司12(阿斯曼等。, 2020)尚未针对SIR进行研究。然而,遗传算法和CA方法可能是互补的,也可能是结合的。例如,使用CA对数据进行预分组,然后在GA中进行微调,可以改进“本地”和“派生”数据集的分离和质量。由于“本地”数据集包含一些重原子,因此在这方面显然还有改进的余地。
最后,虽然所有系统都很容易解决,但与结合动力学和晶体尺寸相关的重原子占有率分布可能是该技术成功的关键因素。在本研究中,我们采用了相对温和(培养时间短,浓度低)的重原子浸泡方案。然而,也许可以通过改变晶体尺寸、光束尺寸、重原子浓度和浸泡时间来改善重原子占用率的分布。尽管如此,我们已经证明了一种极易使用的实验阶段化协议,以及相关的计算分析工具,以振兴MX实验中SIR的常规使用。
5.相关文献
以下参考文献引用于支持信息本文作者:Adams等。(2010).
工具书类
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