抗PDGFRβ-Ty[Y92] C-末端（AB32570）

AB32570免疫组织化学染色法（IHC-P-多聚甲醛固定，石蜡包埋切片）检测人肺癌组织切片中PDGFRβ的表达。基质细胞呈阳性染色。使用热介导的抗原检索。AB93684B（TrIS/EDTA缓冲液，pH 9）。样品与原代抗体（1/500）一起孵育。以HRP偶联的羊抗兔IgG（即刻使用）作为第二抗体。用苏木精染色。

阻塞缓冲器：5% nFDM/TBST

稀释缓冲液：5% NFDM/TBST

用PDGF刺激小鼠NIH/3T3细胞，用未纯化的AB32570染色PDGFRβ进行免疫荧光分析。

用AB32570标记1/20倍稀释法标记PDGFRβ（红色）的NIH/3T3（小鼠胚胎成纤维细胞）细胞流式细胞术。用4%多聚甲醛固定细胞，用90%甲醇渗透。山羊抗兔IgG（Alexa For）^®488）AB1500在1/2000稀释液中用作二级抗体。黑兔单克隆IgGAB17230）蓝色（未标记的对照）-没有初级抗体和次级抗体孵育的细胞。

用AB32570标记1/100倍稀释的大鼠肾组织免疫组化（PFA灌注固定冰冻切片）标记PDGFRβ。用多聚甲醛固定切片，用0.05%吐温20通透。AB6266100X柠檬酸盐缓冲液pH 6。第二抗体为驴抗兔IgG（H+L）高度交叉吸附抗体1/300。

γ

见复审

用纯化的AB32570在100的工作稀释液中免疫荧光染色NIH/3T3（小鼠胚胎成纤维细胞）细胞，用DAPI反染。Tubulin抗小鼠微管蛋白的稀释度为1/1000（AB791和Alexa Fulor^®594羊抗小鼠1/500稀释液（AB150 120）第二抗体是AB1500阿列克萨氟^®488羊抗兔，500稀释使用1。将细胞固定在4% PFA中，并用0.1%个Triton X 100进行渗透。

阴性对照显示在底部中间和右侧面板中，对于第一阴性对照，纯化的AB32570在稀释后使用1/200，随后用Alexa For。^®555羊抗小鼠抗体稀释1/500和第二阴性对照小鼠一级抗体AB791抗兔二级抗体AB1500）。

AB32570（纯化）在NIH/3T3（小鼠胚胎成纤维细胞系）中的1/20免疫沉淀PDGFRβ（1和2）。泳道3 - PBS。

对于Western印迹，使用与非还原形式的IgG特异的HRP结合的抗兔IgG作为第二抗体（1/1500）。

封闭缓冲液和浓度：5% NFDM/TBST。

稀释缓冲液和浓度：5% NFDM/TBST。

人主动脉瓣：免疫荧光标记显示终末期细胞。

将冰冻切片切成6μm的厚度，然后用4%的多聚甲醛固定在0.1μm磷酸盐缓冲液中（pH＝7.4）至少15分钟。用磷酸盐缓冲液洗涤三次后，将切片浸泡在10%山羊血清中1小时。然后，在4℃下用大鼠单克隆抗-CD34孵育切片。AB8158ABCAM，剑桥，英国）和Vimentin的兔单克隆AB92547兔抗PDGF受体β（AB32570，1:100；ABCAM）单克隆抗体或兔多克隆抗-C试剂盒（ABCAM）AB55061:100，在磷酸盐缓冲液中稀释1∶100，同时用0.25% Triton X 100进行渗透。在第二天，将切片用罗丹明二级抗体标记的山羊抗兔和在磷酸缓冲液中以1:200稀释的FITC标记的山羊抗鼠1小时。切片用4’，6二脒基2苯基吲哚（DAPI）染色。

新生大鼠幼崽单次注射GA（1μmol/g）或载体进入C组。伊斯塔尔娜麦格纳. 对14天和30天注射后的DPI特征进行分析，用AB32570双抗体标记ABB阳性细胞，血小板抗体衍生的血小板衍生生长因子（PDGFRβ）抗体稀释1/100。

免疫组化试验在自由漂浮切片上进行。用PBS洗涤切片，用0.05% Triton X-100渗透20分钟，在阻断缓冲液中孵育30分钟（含有0.05%个Triton X-100和5%牛血清白蛋白（BSA）的PBS）。

周细胞标志物PDGFRβ的免疫反应性的代表性图像显示了一些血管（白色箭头）和一些中等大小的阳性细胞（箭头）周围的强信号。在30 DPI，与对照组相比，注射GA的血管周围PDGFRβ信号减少。

阻塞缓冲器：5% nFDM/TBST

稀释缓冲液：5% NFDM/TBST

阻塞缓冲器：5% nFDM/TBST

稀释缓冲液：5% NFDM/TBST

阻塞缓冲器：5% nFDM/TBST

稀释缓冲液：5% NFDM/TBST

AB32570免疫组织化学染色法（IHC-P-多聚甲醛固定，石蜡包埋切片）检测人乳腺组织切片中PDGFRβ的表达。基质细胞呈阳性染色。使用热介导的抗原检索。AB93684B（TrIS/EDTA缓冲液，pH 9）。样品与原代抗体（1/500）一起孵育。以HRP偶联的羊抗兔IgG（即刻使用）作为第二抗体。用苏木精染色。